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申请/专利权人：三得利控股株式会社

摘要：本发明的目的在于提供一种甜菊醇糖苷己糖转移酶及使用该酶的含有葡萄糖及或鼠李糖的甜菊醇糖苷的制造方法。本发明提供一种甜菊醇糖苷己糖转移酶及使用该酶的含有葡萄糖及或鼠李糖的甜菊醇糖苷的制造方法。本发明提供一种导入了甜菊醇糖苷己糖转移酶基因的转化体及该转化体的制作方法。

主权项：1.选自以下a～c中的任一项所记载的蛋白质：a由序列号2的氨基酸序列构成的蛋白质；b由序列号4的氨基酸序列中第156位的氨基酸残基为Val，及或第233位的氨基酸残基为Phe的氨基酸序列构成的蛋白质；c由序列号2的氨基酸序列中第156位的氨基酸残基为Thr，及或第233位的氨基酸残基为Ser的氨基酸序列构成的蛋白质。

全文数据：甜菊醇糖苷己糖转移酶及编码该物质的基因技术领域本发明涉及一种对于甜菊醇糖苷具有转移己糖活性的蛋白质及编码该蛋白质的多核苷酸、利用该蛋白的甜菊醇糖苷的制造方法、对甜菊醇糖苷化酶进行高表达的转化体及根据所述方法制作的甜菊醇糖苷以及其利用。背景技术在菊科甜菊Steviarebaudiana的叶中包含作为二萜的一种的被称作甜菊醇Steviol的次级代谢产物,由于甜菊醇糖苷呈现砂糖的约300倍的甜味而作为低热量的甜味剂在食品产业中被利用。肥胖作为深刻的社会问题在国际上日益严峻，从增进健康及削减医疗费的观点出发低热量甜味剂的需求也日益增大。目前，人工合成的氨基酸衍生物阿斯巴甜Aspartame、乙酰磺胺酸钾AcesulfamePotassium作为人工甜味剂被利用，但像甜菊醇糖苷这样天然存在的低热量甜味剂更为安全，从而期待其容易得到消费者理解PublicAcceptance。甜菊的主要甜菊醇糖苷，以糖最终修饰为附加了4个糖的被称为瑞鲍迪苷ARebaudiosideA；Reb.A的糖苷图1。作为其前体的甜菊醇3糖糖苷的甜菊苷Stevioside在量上最多，这两种物质是甜菊的甜味的核心物质。已知甜菊苷在甜菊叶中的含有最多，且呈现砂糖的250～300倍程度的甜味。Reb.A是甜味高砂糖的350～450倍且味道好的甜菊醇4糖糖苷，这些作为低热量甜味剂受瞩目。除此以外，已知存在被认为是反应中间体的糖苷或糖的种类不同的类似物。例如，Reb.A的4个糖苷糖均为葡萄糖，但是已知有在其中13位的葡萄糖的2位上添加了并非葡萄糖而是鼠李糖的瑞鲍迪苷CReb.C或在同位置上添加了木糖的瑞鲍迪苷FReb.F。生物合成Reb.A的酶基因通过分析甜菊的表达序列标签EST进行分离非专利文献1及2、专利文献1。植物激素即二萜的赤霉素的前体即贝壳杉烯酸的13位由贝壳杉烯酸13位羟基化酶EK13H而羟基化从而生成甜菊醇图2专利文献1。首先甜菊醇的13位的羧基通过甜菊的UDP糖依赖性糖基转移酶UDP-sugardependentglycosyltransferase:UGT即UGT85C2而糖苷化葡糖基化从而生成甜菊单糖苷steviolmonoside非专利文献1、2。甜菊单糖苷的13位的葡萄糖的2位进一步葡糖基化从而生成甜菊双糖苷steviolbioside，或者甜菊单糖苷的19位的羧基葡糖基化生成名为甜叶悬钩子苷Rubusoside的甜菊醇的二糖糖苷。UGT91D2作为对甜菊单糖苷或甜叶悬钩子苷的13位葡萄糖的2位进行葡糖基化的酶被报告。专利文献2：另外，UGT91D2在该文献中被称为UGT91D-like3。一方面，已有报告指出13位的葡萄糖的3位由于UGT76G1而葡糖基化，对于19位的羧酸分别由于UGT74G1而葡糖基化非专利文献2。正如已报告的那样，像这样确定负责糖苷化直至Reb.A的酶基因，使甜菊醇糖苷的生物合成酶群在酵母菌中异位表达，通过培养而生产甜菊醇糖苷专利文献3，甜菊酶的产业上的利用正在进行中。另一方面，负责含有葡萄糖以外的糖苷糖的Reb.C或Reb.F的生物合成的UGT酶尚不清楚。现有技术文献专利文献专利文献1：EP1897951B1专利文献2：WO2013137487专利文献3：WO2014122328非专利文献非专利文献1：BrandleandTelmer2007Phytochemistry68,1855-1863非专利文献2：Richmanetal2005PlantJ.41,56-67发明内容本发明的课题在于提供一种甜菊醇糖苷己糖转移酶及使用该酶的含有葡萄糖及或鼠李糖的甜菊醇糖苷的制造方法。本发明者们为了解决上述课题进行了深入研究，结果成功的确认了甜菊中对甜菊醇糖苷即甜叶悬钩子苷的13位葡萄糖的2位上的鼠李糖添加反应进行催化的UGT91D2L#16酶，以及编码这些蛋白质的基因序列。此外，明确了UGT91D2L#16酶也可催化葡萄糖的转移。此外，本发明者们从存在于对甜菊的甜菊醇糖苷的葡萄糖转移酶UGT91D2和鼠李糖转移酶UGT91D2L#16之间的7种氨基酸变异之中，通过同源建模分析及变异体蛋白质的评估，确定了实际上与糖供体的选择相关的氨基酸残基。本发明基于以上见识。通过利用本发明的酶，可以提供一种甜菊醇糖苷己糖转移酶及使用该酶的含有葡萄糖及或鼠李糖的甜菊醇糖苷的制造方法。此外，通过促进或阻碍本发明的酶的作用，可以控制在甜菊植物体中表达的甜菊醇糖苷的种类。进一步基于本酶基因的序列及表达量，使选择含有特定的甜菊醇糖苷的个体，或代谢工程学上生产含有葡萄糖及或鼠李糖的甜菊醇糖苷的生产成为可能。此外，通过使本发明的蛋白质及编码该蛋白质的多核苷酸和其他的甜菊醇糖苷己糖转移酶或编码该酶的多核苷酸在同一宿主细胞中共表达，可以制作更高程度的糖苷化的甜菊醇糖苷例如，瑞鲍迪苷C、N及O等。进一步，通过利用本发明，可以有效的对UGT的糖供体选择性进行设计，对天然的UGT的活性以及累积的代谢物的糖苷糖进行推断。此外，通过对本发明中确定的与糖供体的选择相关的氨基酸残基在基因组编辑技术等中进行特异性的氨基酸取代，可以应用到对不仅仅是Reb.C等含有鼠李糖的甜菊醇糖苷，还有植物二次代谢物的糖苷糖的控制中。附图说明图1表示甜菊醇糖苷群的名称和结构。图1中，“Glc-Glcβ2→1”表示“Glc-Glc”由β2，1糖苷键的方式键合，“Glc-Glcβ3→1”表示“Glc-Glc”由β3，1糖苷键的方式键合。图2表示甜菊醇糖苷的生物合成路径。图3表示由0.8％琼脂糖凝胶对PCR产物进行电泳，溴化乙锭染色的结果。图4表示使其在大肠杆菌中表达的甜菊UGT蛋白质的蛋白质印迹和SDS-PAGE结果。图5-1表示在负对照区中，将甜叶悬钩子苷葡糖基化生成甜菊苷的活性。图5-2表示在SrUGT91D2中，将甜叶悬钩子苷葡糖基化生成甜菊苷的活性。图5-3表示在SrUGT91D2L#16中，将甜叶悬钩子苷葡糖基化生成甜菊苷的活性。图6-1表示负对照区中，将甜叶悬钩子苷鼠李糖苷化生成杜克苷A的活性。图6-2表示在SrUGT91D2中，将甜叶悬钩子苷鼠李糖苷化生成杜克苷A的活性。图6-3表示在SrUGT91D2L#16中，将甜叶悬钩子苷鼠李糖苷化生成杜克苷A的活性。图7表示关于甜叶悬钩子苷的葡糖基化及鼠李糖苷化，UGT91D2及UGT91D2L#16的对比活性。图8表示利用UGT91D2和UGT91D2L#16的甜菊醇糖苷的糖苷化路径。图9为表示由在酵母菌中的甜菊醇糖苷的生产甜菊醇添加量0.5μgml得到的甜菊醇糖苷的HPLC分析结果的图。图10为表示由在酵母菌中的甜菊醇糖苷的生产甜菊醇添加量2μgml得到的甜菊醇糖苷的HPLC分析结果的图。图10中，Reb.C表示瑞鲍迪苷C，SteE表示甜菊醇单葡糖基酯，SteM表示甜菊醇葡糖苷。图11为表示甜菊醇添加量为2μgml时，A-5678株及A-56R78株中生成的Reb.C的量LC-MS结果。图12为表示UDP-葡萄糖和与其对接的UGT91D2的同源模型的图。图13为图12的框内的扩大图。表示UDP-葡萄糖UDP-Glc和与其接近的第156位的氨基酸Thr156及第233位的氨基酸Ser233的位置关系。图14为表示使其在大肠杆菌中表达的野生型UGT91D2和变异体1的invitro下的葡糖基化活性A及鼠李糖苷化活性B的比较、野生型UGT91D2L#16和变异体2的invitro下的葡糖基化活性C及鼠李糖苷化活性D的比较的图表。数值表示将野生型UGT91D2或野生型UGT91D2L#16作为100％时，变异体1或2的相对活性。图15为表示在导入了各种UGT的酵母菌中，基于野生型UGT91D2、野生型UGT91D2L#16及变异体1～6的葡糖基化活性A及鼠李糖苷化活性B～D的比较的图表。数值表示由LC-MS测定的各生成物的信号强度。具体实施方式以下对本发明进行详细的说明。以下的实施方式为用于说明本发明的例示，并非将本发明仅限定于该实施方式的意思。本发明，只要不脱离该主旨，可以用各种各样的方式实施。且，本说明书中引用的所有的文献及公开公报、专利公报其他的专利文献，作为参考纳入本说明书中。本发明者们最先明确了负责向甜菊醇糖苷的13位葡萄糖的2位进行的葡萄糖及或鼠李糖添加反应的酶蛋白为UGT91D2及UGT91D2L#16。UGT91D2及UGT91D2L#16的CDS序列及推断的氨基酸序列分别为序列号1～4。上述多核苷酸及酶可以由后述的实施例中记载的方法、公知的遗传学的方法、公知的合成方法等获得。1.甜菊醇糖苷己糖转移酶本发明提供选自以下a～c中的任一项所记载的蛋白质以下称“本发明的蛋白质”。a由序列号2的氨基酸序列构成的蛋白质；b由序列号2的氨基酸序列中除氨基酸残基X7以外的1～48个氨基酸缺失、取代、插入、及或添加的氨基酸序列构成的，且具有向下述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质；c具有对于序列号2的氨基酸序列具有90％以上的序列一致性，且与氨基酸残基X7对应的氨基酸为同一氨基酸的氨基酸序列的，且具有向下述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质式中，R1表示H、C1～C20烷基、C2～C20烯基、C2～C20炔基、C4～C20烷基二烯基alkyldienyl、C6～C18芳基、C6～C20烷基芳基、C6～C20芳基烷基、C4～C20环烷基、C4～C20环烯基、C3～C10环烷基C1～C10烷基或糖残基。本发明的蛋白质，根据其他实施方式，为，b'由序列号2的氨基酸序列中除氨基酸残基X1～X7以外的1～48个氨基酸缺失、取代、插入、及或添加的氨基酸序列构成的，且具有向上述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质；或c'具有对于序列号2的氨基酸序列具有90％以上的序列一致性，且与氨基酸残基X1～X7对应的氨基酸为同一氨基酸的氨基酸序列的，且具有向上述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质。本发明的蛋白质，根据其他实施方式，为，b”由序列号2的氨基酸序列中除氨基酸残基X2及或X3以外的1～48个氨基酸缺失、取代、插入、及或添加的氨基酸序列构成的，且具有向上述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质；或c”具有对于序列号2的氨基酸序列具有90％以上的序列一致性，且与氨基酸残基X2及或X3对应的氨基酸为同一氨基酸的氨基酸序列的，且具有向上述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质。本发明的蛋白质，根据其他的实施方式，为，d由在序列号4的氨基酸序列中，第156位的氨基酸残基为Val，及或第233位的氨基酸残基为Phe的氨基酸序列构成的蛋白质；或e由上述d的蛋白质中，1～48个氨基酸缺失、取代、插入、及或添加，与序列号4的第156位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Val，及或与序列号4的第233位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Phe的氨基酸序列构成的，且具有向上述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质；或f具有对于上述d的蛋白质的氨基酸序列具有90％以上的序列一致性，且与序列号4的第156位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Val，及或与序列号4的第233位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Phe的氨基酸序列的，且具有向上述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质。本发明的蛋白质，根据其他实施方式，为，g序列号2的氨基酸序列中氨基酸残基X2为Thr，及或氨基酸残基X3为Ser的蛋白质；或h由上述g的蛋白质中，1～48个氨基酸缺失、取代、插入、及或添加，与氨基酸残基X2对应的氨基酸残基为Thr，及或与氨基酸残基X3对应的氨基酸残基为Ser的氨基酸序列构成的，且具有向上述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质；或i具有对于上述g的蛋白质的氨基酸序列具有90％以上的序列一致性，且与氨基酸残基X2对应的氨基酸残基为Thr，及或与氨基酸残基X3对应的氨基酸残基为Ser的氨基酸序列的，且具有向上述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质。上述b、b'、b”、c、c'、c”、d～i中记载的蛋白质，代表性而言，为天然存在的序列号2或4的多肽的变异体，但是也包含可以利用例如，"Sambrook&Russell,MolecularCloning:ALaboratoryManualVol.3,ColdSpringHarborLaboratoryPress2001"、"Ausubel,CurrentProtocolsinMolecularBiology,JohnWiley&Sons1987-1997"、"Nuc.Acids.Res.,10,64871982"、"Proc.Natl.Acad.Sci.USA,79,64091982"、"Gene,34,3151985"、"Nuc.Acids.Res.,13,44311985"、"Proc.Natl.Acad.Sci.USA,82,4881985"等中记载的定点突变法而人为获取的蛋白质。本说明书中，作为“由序列号2的氨基酸序列中除氨基酸残基X7以外的1～48个氨基酸缺失、取代、插入、及或添加的氨基酸序列构成的，且具有向通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质”，可列举在序列号2的氨基酸序列中，除氨基酸残基X7以外，例如1～48个、1～47个、1～46个、1～45个、1～44个、1～43个、1～42个、1～41个、1～40个、1～39个、1～38个、1～37个、1～36个、1～35个、1～34个、1～33个、1～32个、1～31个、1～30个、1～29个、1～28个、1～27个、1～26个、1～25个、1～24个、1～23个、1～22个、1～21个、1～20个、1～19个、1～18个、1～17个、1～16个、1～15个、1～14个、1～13个、1～12个、1～11个、1～10个、1～9个1～数个、1～8个、1～7个、1～6个、1～5个、1～4个、1～3个、1～2个或1个氨基酸缺失、取代、插入、及或添加的氨基酸序列构成的，且具有向通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质。上述氨基酸残基的缺失、取代、插入、及或添加的数，一般而言越小越优选。此外，作为上述蛋白质，可列举具有与序列号2的氨基酸序列具有90％以上、91％以上、92％以上、93％以上、94％以上、95％以上、96％以上、97％以上、98％以上、99％以上、99.1％以上、99.2％以上、99.3％以上、99.4％以上、99.5％以上、99.6％以上、99.7％以上、99.8％以上或99.9％以上的序列一致性的氨基酸序列的，且具有与氨基酸残基X7对应的氨基酸为同一氨基酸的氨基酸序列的，且具有向通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质。上述序列一致性的数值一般而言越大越优选。同样的，本说明书中，作为“由序列号2的氨基酸序列中除氨基酸残基X1～X7以外的1～48个氨基酸缺失、取代、插入、及或添加的氨基酸序列构成的，且具有向通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质”，可列举在序列号2的氨基酸序列中，氨基酸残基X1～X7以外，例如1～48个、1～47个、1～46个、1～45个、1～44个、1～43个、1～42个、1～41个、1～40个、1～39个、1～38个、1～37个、1～36个、1～35个、1～34个、1～33个、1～32个、1～31个、1～30个、1～29个、1～28个、1～27个、1～26个、1～25个、1～24个、1～23个、1～22个、1～21个、1～20个、1～19个、1～18个、1～17个、1～16个、1～15个、1～14个、1～13个、1～12个、1～11个、1～10个、1～9个1～数个、1～8个、1～7个、1～6个、1～5个、1～4个、1～3个、1～2个或1个氨基酸缺失、取代、插入、及或添加的氨基酸序列构成的，且具有向通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质。上述氨基酸残基的缺失、取代、插入、及或添加的数，一般而言越小越优选。此外，作为上述蛋白质，可列举具有与序列号2的氨基酸序列具有90％以上、91％以上、92％以上、93％以上、94％以上、95％以上、96％以上、97％以上、98％以上、99％以上、99.1％以上、99.2％以上、99.3％以上、99.4％以上、99.5％以上、99.6％以上、99.7％以上、99.8％以上或99.9％以上的序列一致性的氨基酸序列的，且具有与氨基酸残基X1～X7对应的氨基酸为同一氨基酸的氨基酸序列的，且具有向通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质。上述序列一致性的数值一般而言越大越优选。本说明书中，作为“序列号2的氨基酸序列中除氨基酸残基X2及或X3以外的1～48个氨基酸缺失、取代、插入、及或添加的氨基酸序列构成的，且具有向通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质”，可列举在序列号2的氨基酸序列中，氨基酸残基X2及或X3以外，例如1～48个、1～47个、1～46个、1～45个、1～44个、1～43个、1～42个、1～41个、1～40个、1～39个、1～38个、1～37个、1～36个、1～35个、1～34个、1～33个、1～32个、1～31个、1～30个、1～29个、1～28个、1～27个、1～26个、1～25个、1～24个、1～23个、1～22个、1～21个、1～20个、1～19个、1～18个、1～17个、1～16个、1～15个、1～14个、1～13个、1～12个、1～11个、1～10个、1～9个1～数个、1～8个、1～7个、1～6个、1～5个、1～4个、1～3个、1～2个或1个氨基酸残基缺失、取代、插入、及或添加的氨基酸序列构成的，且具有向通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质。上述氨基酸残基的缺失、取代、插入、及或添加的数，一般而言越小越优选。此外，作为上述蛋白质，可列举具有与序列号2的氨基酸序列具有90％以上、91％以上、92％以上、93％以上、94％以上、95％以上、96％以上、97％以上、98％以上、99％以上、99.1％以上、99.2％以上、99.3％以上、99.4％以上、99.5％以上、99.6％以上、99.7％以上、99.8％以上或99.9％以上的序列一致性，且与氨基酸残基X2及或X3对应的氨基酸与序列号2的氨基酸序列的氨基酸为同一氨基酸的氨基酸序列的，且具有向通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质。上述序列一致性的数值一般而言越大越优选。本说明书中，作为“由在d的蛋白质中，1～48个氨基酸缺失、取代、插入、及或添加，与序列号4的第156位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Val，及或与序列号4的第233位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Phe的氨基酸序列构成的，且具有向通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质”，可列举由在d的蛋白质的氨基酸序列中，例如1～48个、1～47个、1～46个、1～45个、1～44个、1～43个、1～42个、1～41个、1～40个、1～39个、1～38个、1～37个、1～36个、1～35个、1～34个、1～33个、1～32个、1～31个、1～30个、1～29个、1～28个、1～27个、1～26个、1～25个、1～24个、1～23个、1～22个、1～21个、1～20个、1～19个、1～18个、1～17个、1～16个、1～15个、1～14个、1～13个、1～12个、1～11个、1～10个、1～9个1～数个、1～8个、1～7个、1～6个、1～5个、1～4个、1～3个、1～2个或1个氨基酸残基缺失、取代、插入、及或添加，且与序列号4的第156位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Val，及或与序列号4的第233位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Phe的氨基酸序列构成的，且具有向通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质。上述氨基酸残基的缺失、取代、插入、及或添加的数，一般而言越小越优选。此外，作为上述蛋白质，可列举具有与d的蛋白质的氨基酸序列具有90％以上、91％以上、92％以上、93％以上、94％以上、95％以上、96％以上、97％以上、98％以上、99％以上、99.1％以上、99.2％以上、99.3％以上、99.4％以上、99.5％以上、99.6％以上、99.7％以上、99.8％以上或99.9％以上的序列一致性，且与序列号4的第156位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Val，及或与序列号4的第233位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Phe的氨基酸序列的，且具有向通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质。上述序列一致性的数值一般而言越大越优选。本说明书中，作为“由在g的蛋白质中，1～48个氨基酸缺失、取代、插入、及或添加，与氨基酸残基X2对应的氨基酸残基为Thr，及或与氨基酸残基X3对应的氨基酸残基为Ser的氨基酸序列构成的，且具有向通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质”，可列举由在g的蛋白质的氨基酸序列中，氨基酸残基X1～X7以外，例如1～48个、1～47个、1～46个、1～45个、1～44个、1～43个、1～42个、1～41个、1～40个、1～39个、1～38个、1～37个、1～36个、1～35个、1～34个、1～33个、1～32个、1～31个、1～30个、1～29个、1～28个、1～27个、1～26个、1～25个、1～24个、1～23个、1～22个、1～21个、1～20个、1～19个、1～18个、1～17个、1～16个、1～15个、1～14个、1～13个、1～12个、1～11个、1～10个、1～9个1～数个、1～8个、1～7个、1～6个、1～5个、1～4个、1～3个、1～2个或1个氨基酸残基缺失、取代、插入、及或添加，且与氨基酸残基X2对应的氨基酸残基为Thr，及或与氨基酸残基X3对应的氨基酸残基为Ser的氨基酸序列构成的，且具有向通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质。上述氨基酸残基的缺失、取代、插入、及或添加的数，一般而言越小越优选。此外，作为上述蛋白质，可列举具有与g的蛋白质的氨基酸序列具有90％以上、91％以上、92％以上、93％以上、94％以上、95％以上、96％以上、97％以上、98％以上、99％以上、99.1％以上、99.2％以上、99.3％以上、99.4％以上、99.5％以上、99.6％以上、99.7％以上、99.8％以上或99.9％以上的序列一致性，且与氨基酸残基X2对应的氨基酸残基为Thr，及或与氨基酸残基X3对应的氨基酸残基为Ser的氨基酸序列的，且具有向通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质。上述序列一致性的数值一般而言越大越优选。在此，所谓“向通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性”，是指向下述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上，添加己糖的活性。在通式I中，Glc表示葡萄糖残基。此外，在通式I中，R1表示H、C1～C20烷基、C2～C20烯基、C2～C20炔基、C4～C20烷基二烯基、C6～C18芳基、C6～C20烷基芳基、C6～C20芳基烷基、C4～C20环烷基、C4～C20环烯基、C3～C10环烷基C1～C10烷基或糖残基。本说明书中，“C1～C20烷基”优选为C1～C10烷基，更优选为C1～C6烷基。作为烷基的例子，并无限制，可列举甲基、乙基、丙基、异丙基、正丁基、仲丁基、叔丁基、戊基、己基、十二碳烯基dodecanyl等。本说明书中，“C2～C20烯基”优选为C2～C10烯基，更优选为C2～C6烯基。作为烯基的例子，并无限制，可列举乙烯基、烯丙基、丙烯基、异丙烯基、2-甲基-1-丙烯基、2-甲基烯丙基、2-丁烯基等。本说明书中，“C2～C20炔基”优选为C2～C10炔基，更优选为C2～C6炔基。作为炔基的例子，并无限制，可列举乙炔基、2-丙炔基、2-丁炔基等。本说明书中，“C4～C20烷基二烯基”优选为C4～C10烷基二烯基，更优选为C4～C6烷基二烯基。作为烷基二烯基的例子，并无限制，可列举1,3-丁二烯等。本说明书中，“C6～C18芳基”优选为C6～C10芳基。作为芳基的例子，并无限制，可列举苯基、1-萘基、2-萘基、茚基、联苯基、蒽基、菲基等。本说明书中，“C6～C20烷基芳基”优选为C6～C12烷基芳基。作为烷基芳基的例子，并无限制，可列举邻甲苯基、间甲苯基、对甲苯基、2,3-二甲苯基、2,4-二甲苯基、2,5-二甲苯基、邻异丙苯基、间异丙苯基、对异丙苯基、莱基等。本说明书中，“C6～C20芳基烷基”优选为C6～C12芳基烷基。作为芳基烷基的例子，并无限制，可列举苯甲基、苯乙基、二苯甲基、三苯甲基、1-萘基甲基、2-萘基甲基、2,2-二苯甲基、3-苯丙基、4-苯丁基、5-苯戊基等。本说明书中，“C4～C20环烷基”优选为C4～C10环烷基。作为环烷基的例子，并无限制，可列举环丙基、环丁基、环戊基、环己基等。本说明书中，“C4～C20环烯基”优选为C4～C10环烯基。作为环烯基的例子，并无限制，可列举环丙烯基、环丁烯基、2-环戊烯-1-基、2-环己烯-1-基、3-环己烯-1-基等。本说明书中，作为“C3～C10环烷基C1～C10烷基”的例子，可列举甲基环丙基、乙基环丙基、甲基环丁基、乙基环戊基、甲基环己基等。本说明书中，“糖残基”并无特别限定，可以为由1以上的戊糖、己糖包括脱氧己糖或其组合构成的糖的残基。作为戊糖的例子，可列举核糖、阿拉伯糖及来苏糖，作为己糖的例子，可列举阿洛糖、阿卓糖、葡萄糖、甘露糖、古洛糖、艾杜糖、半乳糖、塔罗糖、鼠李糖。“糖残基”优选为由1以上的己糖单元构成的糖的残基，更优选为葡萄糖单体-Glc或葡萄糖二聚体-Glc-Glc的糖残基。在葡萄糖二聚体的糖残基中，优选葡萄糖彼此以β2,1糖苷键的方式键合。通式I的化合物优选为甜菊单糖苷或甜叶悬钩子苷。根据本发明的蛋白质，向通式I所示化合物的13位葡萄糖的2位添加的己糖，并无特别限定，优选为选自葡萄糖、鼠李糖、甘露糖及半乳糖中的己糖，更优选为葡萄糖或鼠李糖。上述己糖最优选为鼠李糖。在上述a、b'、b”、c'、c”、d～f所记载的蛋白质中，作为上述己糖，鼠李糖可被特别有利地使用。此外，在上述g～i所记载地蛋白质中，作为上述己糖，葡萄糖可被特别有利地使用。向通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性，可以通过以下方法进行验证：在含有被检测蛋白质、UDP糖例如，UDP-葡萄糖1～1000μM优选100～700μM，最优选500μM及底物化合物通式I的化合物1～500μM优选100～500μM，最优选250μM的pH6.0～8.0的中性区域的缓冲液例如，磷酸钠缓冲液或磷酸钾缓冲液中，于20～40℃的温度下培养10分～2小时后，将上述底物化合物提纯，通过LC-MS分析LiquidChromatography-MassSpectrometry等公知的方法对提纯后的单萜进行分析。LC-MS分析的结果，当检测出在通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加了己糖时，可以称所述被检测蛋白质具有向通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性。上述己糖添加反应一般于1分～12小时左右结束。所谓本发明的蛋白质的氨基酸序列中，1个或复数个氨基酸残基缺失、取代、插入及或添加，是指在同一序列中任意且1个或复数个的氨基酸序列中的位置上，有1个或复数个氨基酸残基缺失、取代、插入及或添加，也可同时发生缺失、取代、插入及添加中的2种以上。以下示出可相互取代的氨基酸残基的例子。包含于同一组的氨基酸残基可以相互取代。A组：亮氨酸、异亮氨酸、正亮氨酸、缬氨酸、正缬氨酸、丙氨酸、2-氨基丁酸、蛋氨酸、邻甲基丝氨酸、叔丁基甘氨酸、叔丁基丙氨酸、环己基丙氨酸；B组：天冬氨酸、谷氨酸、异天冬氨酸、异谷氨酸、2-氨基己二酸、2-氨基辛二酸；C组：天冬酰胺、谷氨；D组：赖氨酸、精氨酸、鸟氨酸、2,4-二氨基丁酸、2,3-二氨基丙酸；E组：脯氨酸、3-羟基脯氨酸、4-羟基脯氨酸；F组：丝氨酸、苏氨酸、高丝氨酸；G群：苯基丙氨酸、酪氨酸。本发明的蛋白质，可以通过使编码该蛋白质的多核苷酸参考后述的“本发明的多核苷酸”在适合的宿主细胞内表达而获取，也可以根据Fmoc法芴甲氧羰基法、tBoc法叔丁氧基羰基法等化学合成法来制造。此外，还可以利用AdvancedAutomationPeptideProteinTechnologies公司制、PerkinElmer公司制、ProteinTechnologies公司制、PerSeptive公司制、AppliedBiosystems公司制、SHIMADZU公司制等肽合成机进行化学合成。2.甜菊醇糖苷的制造方法。通过利用本发明的蛋白质具有的，向通式I所示的化合物的13位的葡萄糖的2位添加己糖的活性，可以简单且大量的制造甜菊醇糖苷。于是，在其他的实施方式中，本发明提供一种包含使本发明的蛋白质与UDP-糖和下述通式I及或下述通式II所示的化合物反应，向通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位添加己糖的工序的，甜菊醇糖苷的第1制造方法。通式I的Glc及R1的定义如上所述。通式I的化合物优选为甜菊单糖苷或甜叶悬钩子苷。本说明书中，所谓“UDP-糖”，是尿苷二磷酸UridineDiPhosphate：UDP键合型的糖。作为UDP-糖中糖部分的优选例子可列举由1个以上的己糖构成的糖。己糖的例子如上所述。UDP-糖优选为UDP-己糖，更优选为选自葡萄糖、鼠李糖、甘露糖及半乳糖中的己糖。上述UDP-糖最优选为UDP-鼠李糖。作为本发明的蛋白质，使用上述a、b'、b”、c'、c”、d～f所记载的蛋白质时，作为UDP-糖，UDP-鼠李糖可被特别有利地使用。此外，作为本发明的蛋白质，使用上述g～i所记载的蛋白质时，作为UDP-糖，UDP-葡萄糖可被特别有利地使用。本发明涉及的甜菊醇糖苷的第1制造方法包含本发明的蛋白质与UDP-糖和通式I所示的化合物反应，向通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位添加己糖的工序。本发明的第1制造方法可以进一步包含对所述工序中生成的甜菊醇糖苷进行提纯的工序。此外，本发明第1制造方法还可包含向所述工序中生成的甜菊醇糖苷上进一步添加糖的工序。作为通过第1制造方法而生成的甜菊醇糖苷的例子，可列举甜菊双糖苷、甜菊苷、杜克苷A、Reb.E或Reb.C或者上述物质的组合，但并不仅限于此。生成的甜菊醇糖苷，通过适当的溶剂水等水性溶液或醇、醚及丙酮等有机溶剂萃取，可通过利用乙酸乙酯、其他有机溶剂：水的梯度、高效液相色谱法HighPerformanceLiquidChromatography：HPLC、超高效液相色谱UltraHighPerformanceLiquidchromatography：UPLC等公知的方法提纯。3.甜菊醇糖苷高含量的非人类转化体甜菊醇糖苷也可通过使用本发明的的蛋白质在细菌大肠杆菌或酵母菌等、植物、昆虫、除人类以外的哺乳动物等的细胞内生成。本发明的蛋白质为来自甜菊的酶或其变异体，所以期待其在细胞内环境中也具有高活性。此时，可以通过将编码本发明的蛋白质的多核苷酸参考后述的“本发明的多核苷酸”导入来自细菌、植物、昆虫、除人类以外的哺乳动物等的宿主细胞中从而表达本发明的蛋白质，使本发明的蛋白质和在上述细胞内存在的UDP-糖及通式I所示的化合物反应而生成甜菊醇糖苷。于是本发明提供一种导入了选自以下a～e中的任一项所记载的多核苷酸以下称“本发明的多核苷酸”的非人类转化体以下称“本发明的转化体”。a含有序列号1的碱基序列的多核苷酸；b编码由序列号2的氨基酸序列构成的蛋白质的多核苷酸；c编码由序列号2的氨基酸序列中除氨基酸残基X7以外1～48个氨基酸缺失、取代、插入及或添加的氨基酸序列构成的，且具有向上述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位添加己糖的活性的蛋白质的多核苷酸；d编码具有对于序列号2的氨基酸序列具有90％以上的序列一致性，且与氨基酸残基X7对应的氨基酸为同一氨基酸的氨基酸序列的，且具有向上述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质的多核苷酸。此外，根据本发明的一种实施方式提供，c'编码由序列号2的氨基酸序列中除氨基酸残基X1～X7以外1～48个氨基酸缺失、取代、插入及或添加的氨基酸序列构成的，且具有向上述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位添加己糖的活性的蛋白质的多核苷酸；或d'编码具有对于序列号2的氨基酸序列具有90％以上的序列一致性，且与氨基酸残基X1～X7对应的氨基酸为同一氨基酸的氨基酸序列的，且具有向上述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质的多核苷酸。根据本发明的其他实施方式提供，c”编码在序列号2的氨基酸序列中除氨基酸残基X2及或X3以外的1～48个氨基酸缺失、取代、插入、及或添加的氨基酸序列构成的，且具有向上述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质的多核苷酸；或d”编码具有对于序列号2的氨基酸序列具有90％以上的序列一致性，且与氨基酸残基X2及或X3对应的氨基酸为同一氨基酸的氨基酸序列的，且具有向上述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质的多核苷酸。根据本发明的其他实施方式提供，e编码由序列号4的氨基酸序列中，第156位的氨基酸残基为Val，及或第233位的氨基酸残基为Phe的氨基酸序列构成的蛋白质的多核苷酸；或f编码由上述e所述的蛋白质中，1～48个氨基酸缺失、取代、插入、及或添加，与序列号4的第156位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Val，及或与序列号4的第233位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Phe的氨基酸序列构成的，且具有向上述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质的多核苷酸；或g编码具有对于上述e所述的蛋白质的氨基酸序列具有90％以上的序列一致性，且与序列号4的第156位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Val，及或与序列号4的第233位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Phe的氨基酸序列的，且具有向上述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质的多核苷酸。根据本发明的其他实施方式提供，h编码序列号2的氨基酸序列中，氨基酸残基X2为Thr，及或氨基酸残基X3为Ser的蛋白质的多核苷酸；或i编码由在上述h所述的蛋白质中1～48个氨基酸缺失、取代、插入、及或添加，与氨基酸残基X2对应的氨基酸残基为Thr，及或与氨基酸残基X3对应的氨基酸残基为Ser的氨基酸序列构成的，且具有向上述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质的多核苷酸；或j编码具有对于上述h所述的蛋白质的氨基酸序列具有90％以上的序列一致性，且与氨基酸残基X2对应的氨基酸残基为Thr，及或与氨基酸残基X3对应的氨基酸残基为Ser的氨基酸序列的，且具有向上述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质的多核苷酸。通式I的定义及具体例正如已述内容，此外，向通式I所示化合物的13位葡萄糖的2位上添加的己糖的定义及具体例也如前所述。本说明书中，所谓多核苷酸，是指DNA或RNA。本说明书中，所谓“高严格的条件下杂交的多核苷酸”是指，例如，将由与序列号1的碱基序列所构成的多核苷酸或由编码序列号2的氨基酸序列的碱基序列构成的多核苷酸的全部或者一部分作为探针，通过使用菌落杂交法、噬菌斑杂交法或Southern杂交法等获得的多核苷酸。作为杂交的方法，例如，可以利用"Sambrook&Russell，MolecularCloning：ALaboratoryManualVol.3,ColdSpringHarbor,LaboratoryPress2001"及"Ausubel,CurrentProtocolsinMolecularBiology,JohnWiley&Sons1987-1997"等中所记载的方法。本说明书中，所谓“高严格的条件”，例如，为15×SSC、5×Denhardt's溶液、0.5％SDS、50％甲酰胺、50℃、20.2×SSC、0.1％SDS、60℃、30.2×SSC、0.1％SDS、62℃、40.2×SSC、0.1％SDS、65℃或50.1×SSC、0.1％SDS、65℃的条件，但并不限定于此。在这些条件中，越将温度提高越期待可以高效的获取具有高度序列一致性的DNA。但是，作为影响杂交的严格度的要素，需要考虑温度、探针浓度、探针长度、离子强度、时间、盐浓度等复数个要素，若是本领域的技术人员，适当选择这些要素，可以实现同样的严格度。另外，在杂交中使用市售的试剂盒时，例如可以使用AlkphosDirectLabellingandDetectionSystemGEHealthcare。此时，依照试剂盒所附规程，与已标识的探针培育一晚后，于55～60℃的条件下以含有0.1％wvSDS的1次洗净缓冲液将膜洗净后，可以检测出杂交后的DNA。或者，在基于与序列号1的碱基序列互补的碱基序列、或与编码序列号2的氨基酸序列的碱基序列的全部或一部分互补的序列制作探针时，利用市售的药剂例如，PCRLabelingMixRoche·Diagnostics公司等对该探针进行地高辛DIG标记时，可以利用DIG核酸检测试剂盒Roche·Diagnostics公司检测杂交。作为上述之外可能杂交的多核苷酸，可列举，通过FASTA、BLAST等相同性检索软件，利用默认参数进行计算时，与序列号1的DNA或编码序列号2的氨基酸序列的DNA具有80％以上、81％以上、82％以上、83％以上、84％以上、85％以上、86％以上、87％以上、88％以上、89％以上、90％以上、91％以上、92％以上、93％以上、94％以上、95％以上、96％以上、97％以上、98％以上、99％以上、99.1％以上、99.2％以上、99.3％以上、99.4％以上、99.5％以上、99.6％以上、99.7％以上、99.8％以上或99.9％以上的序列一致性的DNA。另外，氨基酸序列或碱基序列的序列一致性可以使用FASTAScience2274693:1435-1441,1985或Karlin及Altschul提出的算法BLASTBasicLocalAlignmentSearchToolProc.Natl.Acad.Sci.USA872264-2268,1990；ProcNatlAcadSciUSA90:5873,1993来确定。基于BLAST的算法的称作blastn、blastx、blastp、tblastn或tblastx程序已被开发AltschulSF,etal:JMolBiol215:403,1990。使用blastn对碱基序列进行分析时，例如参数设置为score＝100、wordlength＝12。此外，使用blastp对氨基酸序列进行分析时，例如参数设置为score＝50、wordlength＝3。使用BLAST和GappedBLAST程序时，使用各程序的默认参数。上述本发明的多核苷酸可以由公知的基因工程学的方法或公知的合成方法获得。本发明的多核苷酸优选以插入适当的表达载体的状态导入宿主。适当的表达载体，通常由含有下述物质而构成。i在宿主细胞内可以转录的启动子ii与该启动子结合的本发明的多核苷酸；及iii和RNA分子的转录终止及聚腺苷酸化相关，作为在宿主细胞内发挥作用的信号的构成要素而含有的表达盒作为表达载体的制作方法，可列举利用质粒、噬菌体或粘粒的方法，并无特别限定。载体的具体种类并特别限定，可以适当选择在宿主细胞中可以表达的载体。即，根据宿主细胞的种类，为了确切地使本发明的多核苷酸进行表达而选择适当的启动子序列，将此启动子和本发明的多核苷酸编入各种质粒等中的载体作为表达载体使用即可。本发明的表达载体，依赖于需要导入的宿主的种类，含有表达控制区域例如，启动子、终止子及或复制起点等。作为细菌用表达载体的启动子，使用惯用的启动子例如，trc启动子、tac启动子、lac启动子等，作为酵母菌用启动子，例如可列举GAL1启动子、GAL10启动子、甘油醛-3-磷酸脱氢酶启动子、PH05启动子等，作为丝状真菌用启动子，例如可列举淀粉酶、trpC等。此外，作为使植物细胞内的目的基因表达的启动子的例子，可列举花椰菜花叶病毒的35SRNA启动子、rd29A基因启动子、rbcS启动子、将上述花椰菜花叶病毒的35SRNA启动子的增强子序列添加到来自农杆菌的甘露碱合成酶启动子序列的5’侧的mac-1启动子等。作为动物细胞宿主用启动子，可列举病毒性启动子例如，SV40初期启动子、SV40后期启动子等。表达启动子优选含有至少一种的选择标记。作为上述标记，可以利用营养缺陷型标记ura5、niaD、TRP1、URA3、HIS3、LEU2、耐药性标记潮霉素、博来霉素、耐遗传霉素性基因G418r、耐铜性基因CUP1Marinetal.,Proc.Natl.Acad.Sci.USA,vol.81,p.337,1984、耐浅蓝霉素性基因fas2m、PDR4分别为，猪腰淳嗣等，生物化学，vol.64,p.660,1992；Hussainetal.,Gene,vol.101,p.149,1991等。本发明的转化体的制作方法生产方法并无特别限定，例如可列举将含有本发明的多核苷酸的表达载体导入宿主的转化方法。期待本发明的转化体能高效地生成甜菊醇糖苷。用于转化的宿主细胞并非特别限定，可以适当使用公知的各种细胞。例如，作为宿主细胞的例子，可列举大肠杆菌Escherichiacoli等细菌，酵母菌出芽酵母Saccharomycescerevisiae、裂殖酵母Schizosaccharomycespombe、植物细胞、除人类以外的动物细胞等。宿主细胞可以是异种细胞来自甜菊以外的细胞、也可以是同种细胞来自甜菊的细胞。作为转化体使用同种细胞时，本发明的转化体在内在性表达的蛋白质之外，还表达外在导入的本发明的蛋白质，因此相比于野生型甜菊细胞更促进酶反应。宿主细胞优选为能生成通式I所示的化合物的宿主细胞。在此，宿主细胞并不限定于在天然状态下可生成通式I所示的化合物的细胞，例如，也可以为经过由公知的基因的重组而变得可以生成通式I所示的化合物的细胞。作为编码有助于通式I所示的化合物的合成的酶的基因，可列举EK13H、UGT74G1及UGT76G1非专利文献2等公知的基因，但并非仅限于此。宿主细胞为不能生成通式I所示的化合物的细胞时，通过向该宿主细胞中导入本发明的基因而得到的转化体的培养系中，作为底物添加通式I的化合物或含有该化合物的植物萃取物，即使不导入编码有助于通式I所示的化合物的合成的酶的基因，也能制造甜菊醇糖苷。进一步，使用导入了可编码与从甜菊醇至瑞鲍迪苷A的一系列的糖苷合成相关的糖苷化酶的基因的宿主细胞，通过在该宿主细胞内使本发明的多核苷酸表达，能够制作更高度的糖苷化的甜菊醇糖苷例如，甜菊醇双糖苷、瑞鲍迪苷A、甜菊苷及瑞鲍迪苷B等。作为与从甜菊醇至瑞鲍迪苷A的一系列的糖苷合成相关的糖苷化酶及其基因的例子，可列举UGT85C2CDS序列：序列号7、氨基酸序列：序列号8、UGT74G1CDS序列：序列号9、氨基酸序列：序列号10、UGT76G1CDS序列：序列号11、氨基酸序列：序列号12等。用于上述的宿主细胞的适当的培养基及培养条件在该领域中众所周知。此外，作为转化体的对象的生物也非特别限定，可列举上述由宿主细胞而例示的各种微生物或植物或除人类以外的动物。此外，关于一般分子生物学的方法，可参考"Sambrook&Russell,MolecularCloning:ALaboratoryManualVol.3,ColdSpringHarborLaboratoryPress2001"、"MethodsinYeastGenetics、AlaboratorymanualColdSpringHarborLaboratoryPress、ColdSpringHarbor,NY"等。通过培养如此得到的转化体，可以使转化体生产甜菊醇糖苷。如上所述，通过在转化体的培养系中作为底物添加通式I的化合物或含有该化合物的植物萃取物，可以促进甜菊醇糖苷的制造。通过对累积的甜菊醇糖苷进行萃取、提纯，可以得到目的物的甜菊醇糖苷。从而，本发明提供一种以使用本发明的转化体为特征的甜菊醇糖苷的第2制造方法。适当的培养基及培养条件在该领域众所周知。此外，关于甜菊醇糖苷的萃取、提纯如上所述。甜菊醇糖苷并无特别限定，优选为选自甜菊双糖苷、甜菊苷、杜克苷A、Reb.E或Reb.C或者上述物质的组合中的物质。在本发明的1种实施方式中，作为转化的宿主细胞可以使用任意的酵母菌。具体而言，可列举酵母菌Saccharomyces属等的酵母菌，但并不仅限于此。作为酵母的转化方法，可利用通常所用的公知的方法。例如可以通过电穿孔法"Meth.Enzym.,194,p1821990"、原生质球法"Proc.Natl.Acad.Sci.USA,75p19291978"、醋酸锂法"J.Bacteriology,153,p1631983"、Methodsinyeastgenetics,2000Edition:AColdSpringHarborLaboratoryCourseManual等中记载的方法来实施，但并不限定于此。转化株，通过选择于具有与使用的选择标记相符的选择压的培养基例如，含有抗生素的培养基或缺失营养素的培养基上培育的株群而获得。在本发明的1种实施方式中，转化体可以是植物转化体。本实施方式所涉及的植物转化体，通过将含有本发明所涉及的多核苷酸的重组载体导入植物中从而使由该多核苷酸而编码的多肽得到表达而获取。或者，因为本发明的基因会遗传给后代，从而通过将本发明的转化体作为杂交亲本使用，可以得到具有该基因的新型植物体。使用重组表达载体时，植物体的转化所使用的重组表达载体，只要是该植物内可以使本发明涉及的多核苷酸表达的载体就无特别限定。作为上述载体，例如可列举具有使植物细胞内多核苷酸进行组成性表达的启动子的载体或具有由于外在刺激活化为诱导型的启动子的载体。作为使多核苷酸在植物细胞内进行组成性表达的启动子的例子，可列举椰菜花叶病毒的35SRNA启动子、rd29A基因启动子、rbcS启动子、mac-1启动子等。作为由于外在刺激活化为诱导型的启动子的例子，可列举小鼠乳腺瘤病毒MMTV启动子、四环霉素应答性启动子、金属硫蛋白启动子及热休克蛋白启动子等。本发明中成为转化的对象的植物是指植物体全体、植物器官例如叶、花瓣、茎、根、种子等、植物组织例如表皮、韧皮部、软组织、木质部、维管束、栅栏薄壁组织、海绵状组织等或植物培养细胞、又或者各种形态的植物细胞例如悬浊培养细胞、原生质体、叶的切片、愈伤组织的任意一种。作为转化所使用的植物，并无特别限定，可以是属于单子叶植物纲或双子叶植物纲的植物的任意一种。在对植物的基因导入中，使用本领域的技术人员所公知的转化方法例如，农杆菌法、基因枪法、PEG法、电穿孔法、粒子枪等。导入了基因的细胞或植物组织，首先通过潮霉素抗性等耐药性的选择，然后依照常规再生为植物体。由转化细胞到植物体的再生可以根据植物细胞的种类通过本领域的技术人员所公知的方法实施。对本发明的多核苷酸是否导入到植物中的确认，可以通过PCR法、Southern杂交法、Northern杂交法等来实施。一旦获得本发明的多核苷酸编入基因组的转化植物体，就可以通过该植物体的有性繁殖或无性繁殖得到后代。此外，由该植物体或其后代，又或者其克隆，得到例如种子、果实、插枝、块茎、块根、植物株、愈伤组织、原生质体等，以这些为基础可以对该植物体进行量产。因此，本发明包含，将本发明所涉及的多核苷酸可表达性地导入的植物体，或和该植物体具有相同性质的该植物的后代，或来自这些的组织。此外，各种各样针对植物的转化方法已经被报告。作为本发明涉及的转化体植物并没有限制，作为特别优选的例子，希望使用以甜菊醇作为糖苷配基的各种对糖苷进行生物合成而被熟知植物，作为这样的植物，可列举甜菊或甜叶悬钩子Rubussuavissimus等。以本发明的多核苷酸进行转化的植物体以下“本发明的植物”或“本发明的植物体”，在具有适当的底物时，或者由外部添加适当的底物时，相比其野生型可以大量生产甜菊醇糖苷。本发明的植物可以通过培育本发明的植物的种子、插枝、球根等简单的获得完整的植物体。因此，本发明的植物包含，植物体全体、植物器官例如叶、花瓣、茎、根、种子、球根等、植物组织例如表皮、韧皮部、软组织、木质部、维管束、栅栏薄壁组织、海绵状组织等或植物培养细胞、又或者各种形态的植物细胞例如悬浊培养细胞、原生质体、叶的切片、愈伤组织等。4.转化体的萃取物及其利用本发明在其他的实施方式中，提供上述转化体的萃取物。本发明的转化体在具有适当的底物时，或者由外部添加适当的底物时，相比其野生型甜菊醇糖苷的含量高，因此认为其萃取物中以高浓度含有甜菊醇糖苷。本发明的转化体的萃取物，即使转化体为来自甜菊的细胞，相比野生型甜菊的萃取物，相对于甜菊醇糖苷全体中的糖苷配基的己糖的比例，特别是鼠李糖及或葡萄糖的比例高。本发明的转化体中，被导入的本发明的蛋白质进行表达，向甜菊醇糖苷上添加己糖，因此在集中性的捕捉到甜菊醇糖苷全体时，相比于所涉及的蛋白质未表达的细胞例如，野生型甜菊细胞，单位数量的甜菊醇糖苷配基上添加的己糖的残基数多。相对于甜菊醇糖苷全体中的糖苷配基的己糖的比例的变化，对萃取物的特性，例如甜味等感官性特性有影响。本发明的转化体的萃取物，可以通过对转化体用玻璃珠、均化机或超声破碎仪等进行破碎，对该破碎物进行离心处理，回收其上清液而获得。进一步，根据上述甜菊醇糖苷的萃取方法，可以施加进一步的萃取工序。本发明的转化体的萃取物可以依照常规用于，例如食品、医药品、工业原料的制造等的用途。此外本发明在其他的实施方式中，提供含有本发明的转化体的萃取物的食品、医药、工业原料食品等的原料。含有本发明的转化体的萃取物的食品、医药、工业原料的制备依照常规。如此，含有本发明的转化体的萃取物的食品、医药、工业原料等含有利用本发明的转化体而生成的甜菊醇糖苷。上述食品、医药、工业原料也可以含有非天然成分。作为非天然成分，可列举天然条件下不存在的化合物，例如合成调味剂、合成防腐剂等合成添加物、发酵产物等。作为本发明的食品的例子，可列举营养补充食品、健康食品、机能性食品、幼儿用食品、老人用食品等。本说明书中，食品为固体、流体及液体，以及他们的混合物，是可摄食物品的总成。所谓营养补充食品，是指强化特定的营养成分的食品。所谓健康食品，是指健康的或者对健康有利的食品，包含营养补充食品、自然食品、减肥食品等。所谓机能性食品，是指为了补充起到对身体的调节机能的营养成分的食品，和特定保健用食品意思相同。所谓幼儿用食品，是指用于提供给约至6岁的儿童的食品。所谓老人用食品，是指相比于没有处理的食品，为了容易消化及吸收而处理过的食品。本发明的食品，作为甜味剂使用低热量的甜菊醇糖苷。因此，本发明的食品为低热量的，具有有利于增进健康或维持健康的优点。作为这些食品的形态的例子，可以是面包、面类、意大利面、米饭、糕点类蛋糕、冰淇淋、棒冰、炸面包圈、烤制点心、糖果、口香糖、橡皮糖、片剂糖，以及丸子及馒头等日本糕点、豆腐及其加工品等农产食品、清酒、药用酒、甜料酒、食醋、酱油、日本大酱等发酵食品、酸奶、火腿、培根、香肠等畜产食品、鱼糕、炸天妇罗、鱼肉山芋饼等水产食品、果汁饮料、清凉饮料、运动饮料、酒精饮料、茶等或者调味料。作为进一步的食品的形态的例子，可列举低热量饮料、无糖饮料、水果罐头、乳制饮料、粉末饮料、酸奶、果冻、调味汁、面蘸汁、腌菜、日本佃煮Tsukudani、酱油、日本大酱、腌制食品、Vermont醋、糖醋藠头、糖醋生姜、醋藕，此外，腌菜、天妇罗及蒲烧的酱汁、烤肉的酱汁、酱等，口香糖、糖及饴糖、牙膏、炸鱼饼、日式煎蛋卷、炒荞麦面酱、中华冷面汁、醋腌青花鱼、冰点心、雪葩、甜筒冰淇淋鱼肉加工食品、点心、脆米饼、玉米杯、调味海苔、油炸面团、鱼粉拌紫菜等。本发明的食品包含任意的加工食品。在一种实施方式中，加工食品虽以天然物质为原料，但其特性例如，弹性、粘性、硬度等物理特性、味道、气味、口感等感官特性与天然物不同。现存的多数加工食品属于该种类。在其他的实施方式中，加工食品含有非天然成分。此外，本发明的食品包含任意的饮料。在一种实施方式中，饮料虽以天然物质为原料，但其特性例如，粘性、凝聚力等物理特性、味道、气味、口感等感官特性与天然物不同。作为所涉及的饮料的例子，可列举发酵饮料例如，乳酸饮料、清酒、红酒、啤酒、药用酒等酒精饮料、乌龙茶等半发酵茶、红茶等全发酵茶、普洱茶等后发酵茶、思慕雪Smoothie、奶昔等。在其他的实施方式中，饮料含有非天然成分。本发明的医药品组合物的剂型并无特别限定，可以为溶液状、膏状、凝胶状、固体状、粉末状等任意的剂型。此外，本发明的医药品组合物可以用于，油、化妆水、乳霜、乳液、凝胶、洗发水、护发素、润发精、指甲油、粉底、口红、粉、面膜、软膏、散粉、牙膏、喷雾式药剂、洗面奶等皮肤外用药、沐浴用剂、生发剂、皮肤美容液、防晒等。本发明的医药组合物根据需要，可以进一步含有其他的医药活性成分例如，消炎成分或辅助成分例如，润滑成分、载体成分。医药活性成分或辅助成分，可以是天然成分也可以是非天然成分。5.筛选具有鼠李糖基的甜菊醇糖苷高含量的植物的方法本发明提供一种筛选具有鼠李糖基的甜菊醇糖苷高含量的植物的方法。具体而言，上述方法含有以下1～3的工序。1从被检植物中提取mRNA的工序2使上述mRNA或由上述mRNA制备的cDNA和由与本发明的多核苷酸互补的碱基序列所构成的多核苷酸和高严格条件下杂交的多核苷酸杂交的工序3检测上述杂交的工序上述工序1可以通过由从被检植物中提取mRNA来实施。对mRNA进行提取的被检植物的部位并无特别限定，优选花瓣。提取mNRA后，可以通过反转录由mRNA制备cDNA。工序2可以通过对于上述工序中提取的mRNA,以由与本发明的多核苷酸互补的碱基序列所构成的多核苷酸或寡核苷酸作为探针或引物，在高严格条件下使其杂交而实施。高严格的条件如前所述。多核苷酸或寡核苷酸的长度优选为5～500bp，更优选为10～200bp，进一步优选为10～100bp。多核苷酸或寡核苷酸，可以使用各种自动合成装置例如，AKTAoligopilotplus10100GEHealthcare而简单的合成，或者可以委托第三机构例如，Promega公司或者Takara公式等。工序2中将由与本发明的多核苷酸互补的碱基序列所构成的多核苷酸作为探针使用时，工序3可以根据通常的Southern印迹杂交、Northern印迹杂交Sambrook,FritschandManiatis,”MolecularCloning:ALaboratoryManual”2ndEdition1989,ColdSpringHarborLaboratoryPress、微阵列参考Affymetrix公司；美国专利第6,045,996号、同第5,925,525号、及び同第5,858,659号、TaqManPCRSambrook,FritschandManiatis,”MolecularCloning:ALaboratoryManual”2ndEdition1989,ColdSpringHarborLaboratoryPress、FluorescentInSituHybridizationFISHSiebenV.J.etal.,2007-06.IETNanobiotechnology13:27-35等杂交检测方法来实施。另一方面，工序2中将由与本发明的多核苷酸互补的碱基序列所构成的多核苷酸作为引物使用时，工序3可以通过实施PCR扩增反应，对得到的扩增产物通过电泳或测序Sambrook,FritschandManiatis,”MolecularCloning:ALaboratoryManual”2ndEdition1989,ColdSpringHarborLaboratoryPress等进行分析，对杂交进行检测。更加大量的检测出杂交的植物体可谓，相比于其他的植物体，更多的表达了具有向下述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖，特别是鼠李糖的活性的蛋白质，因此预测具有鼠李糖基的甜菊醇糖苷的含量高。6.制造改变了糖供体选择性的UGT的方法在其他侧面，本发明提供一种制造改变了糖供体选择性的UGT的方法。在一种实施方式中，上述方法含有以下1～2的工序。1UGT的氨基酸序列中，对与选自序列号2的氨基酸残基X2、序列号2的氨基酸残基X3、序列号4的第156位的氨基酸残基及或序列号4的第233位的氨基酸残基的氨基酸残基对应的氨基酸残基进行确定的工序，及2与序列号2的氨基酸残基X2或序列号4的第156位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Thr或Ser，优选为Thr时，将其取代为Val、Leu、Ile、Ala或Met，优选为Val，为Val、Leu、Ile、Ala或Met，优选为Val时，将其取代为Thr或Ser，优选为Thr，及或与序列号2的氨基酸残基X3或序列号4的第233位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Ser或Thr，优选为Ser时，将其取代为Phe或Tyr，优选为Phe，为Phe或Tyr，优选为Phe时，将其取代为Ser或Thr，优选为Ser的工序。在特定的实施方式中，本发明提供一种制造糖供体选择性由UDP-葡萄糖变为UDP-鼠李糖的UGT的方法。在一种实施方式中，上述方法含有以下1～2的工序。1对具有与序列号2的氨基酸残基X2或序列号4的第156位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Thr或Ser，优选为Thr的，及或与序列号2的氨基酸残基X3或序列号4的第233位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Ser或Thr，优选为Ser的氨基酸序列的UGT进行确定的工序，21中确定的UGT的氨基酸序列中，与序列号2的氨基酸残基X2或序列号4的第156位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Thr或Ser，优选为Thr时，将其取代为Val、Leu、Ile、Ala或Met，优选为Val，及或与序列号2的氨基酸残基X3或序列号4的第233位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Ser或Thr，优选为Ser时，将其取代为Phe或Tyr，优选为Phe的工序。在其他的实施方式中，上述方法含有以下1～3的工序。1确定对于UDP-葡萄糖具有糖供体选择性的UGT的工序，21中确定的UGT的氨基酸序列中，对与选自序列号2的氨基酸残基X2、序列号2的氨基酸残基X3、序列号4的第156位的氨基酸残基及或序列号4的第233位的氨基酸残基的氨基酸残基对应的氨基酸残基进行确定的工序，及3与序列号2的氨基酸残基X2或序列号4的第156位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Thr或Ser，优选为Thr时，将其取代为Val、Leu、Ile、Ala或Met，优选为Val，及或与序列号2的氨基酸残基X3或序列号4的第233位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Ser或Thr，优选为Ser时，将其取代为Phe或Tyr，优选为Phe的工序。在其他特定的实施方式中，本发明提供一种制造糖供体选择性由UDP-鼠李糖变为UDP-葡萄糖的UGT的方法。在一种实施方式中，上述方法含有以下1～2的工序。1对具有与序列号2的氨基酸残基X2或序列号4的第156位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Val、Leu、Ile、Ala或Met，优选为Val的，及或与序列号2的氨基酸残基X3或序列号4的第233位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Phe或Tyr，优选为Phe的氨基酸序列的UGT进行确定的工序，21中确定的UGT的氨基酸序列中，与序列号2的氨基酸残基X2或序列号4的第156位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Val、Leu、Ile、Ala或Met，优选为Val时，将其取代为Thr或Ser，优选为Thr，及或与序列号2的氨基酸残基X3或序列号4的第233位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Phe或Tyr，优选为Phe时，将其取代为Ser或Thr，优选为Ser的工序。在其他实施方式，上述方法含有以下1～3的工序。1确定对于UDP-鼠李糖具有糖供体选择性的UGT的工序，21中确定的UGT的氨基酸序列中，对与选自序列号2的氨基酸残基X2、序列号2的氨基酸残基X3、序列号4的第156位的氨基酸残基及或序列号4的第233位的氨基酸残基的氨基酸残基相对应的氨基酸残基进行确定的工序，及3与序列号2的氨基酸残基X2或序列号4的第156位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Val、Leu、Ile、Ala或Met，优选为Val时，将其取代为Thr或Ser，优选为Thr，及或与序列号2的氨基酸残基X3或序列号4的第233位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Phe或Tyr，优选为Phe时，将其取代为Ser或Thr，优选为Ser的工序。在上述制造改变了糖供体选择性的UGT的各种方法中，作为对象的UGT的氨基酸序列中，与特定的氨基酸序列相对应的氨基酸序列的确定可通过任意的已知的方法，例如，作为对象的UGT的氨基酸序列和作为标准的氨基酸序列序列号2或4的比对，或以由序列号2或4的氨基酸序列构成的蛋白质为模板的同源建模等来实施。作为对象的UGT中氨基酸的取代可通过例如，上述的部位定点突变法等来实施。此外在具有作为对象UGT的植物的基因组中，通过对编码糖供体选择性所涉及的上述氨基酸的多核苷酸进行基因组编辑等，可以改变为使所希望的氨基酸得到表达。对于UDP-葡萄糖或UDP-鼠李糖具有糖供体选择性的UGT的确定，可以通过理论性或实验性的方法来实施。对上述UGT进行实验性确定时，可以对例如，使作为对象的UGT和UDP-葡萄糖或UDP-鼠李糖及糖受体底物例如，通式I所示的化合物在适宜糖苷化反应的条件下反应的结果与，除作为糖供体使用与上述反应中所使用的物质不同的化合物以外，在相同条件下进行反应的结果进行对比。使用了UDP-葡萄糖或UDP-鼠李糖的反应，相比于使用了除此之外的糖供体的反应效率好时，可以确定该UGT对于UDP-葡萄糖或UDP-鼠李糖具有糖供体选择性。通过上述各方法，可以简单的设计或制造对于UDP-葡萄糖或UDP-鼠李糖具有糖供体选择性的UGT。此外，通过在基因组水平上对UGT的氨基酸残基进行取代，可以改变植物体内表达的UGT的糖供体选择性，从而可以控制植物体中累积的糖苷糖的种类。7.推断UGT的糖供体选择性的方法在其他的侧面，本发明提供一种推断UGT的糖供体选择性的方法。在一种实施方式中，上述方法含有以下1～2的工序。1在UGT的氨基酸序列中，对与选自序列号2的氨基酸残基X2、序列号2的氨基酸残基X3、序列号4的第156位的氨基酸残基及或序列号4的第233位的氨基酸残基的氨基酸残基对应的氨基酸残基进行确定的工序，及2与序列号2的氨基酸残基X2或序列号4的第156位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Thr或Ser，优选为Thr时，及或与序列号2的氨基酸残基X3或序列号4的第233位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Ser或Thr，优选为Ser时，推断上述UGT具有对UDP-葡萄糖的糖供体选择性，与序列号2的氨基酸残基X2或序列号4的第156位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Val、Leu、Ile、Ala或Met，优选为Val时，及或与序列号2的氨基酸残基X3或序列号4的第233位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Phe或Tyr，优选为Phe时，推断上述UGT具有对UDP-鼠李糖的糖供体选择性的工序。在上述方法的工序1中，作为对象的UGT的氨基酸序列中与特定的氨基酸残基相对应的氨基酸残基的确定，可以与制造改变了糖供体选择性的UGT的方法一样地实施。根据本方法通过推断UGT的糖供体选择性，可以合理的实施与UGT的特征赋予相关的实验设计，削减不需要的实验。8.推断在植物体中累积的与甜菊醇糖苷的13位葡萄糖的2位键合的糖的种类的方法。在其他的侧面，本发明提供一种推断与植物体中累积的甜菊醇糖苷的13位葡萄糖的2位键合的糖的种类的方法。在一种实施方式中，上述方法含有以下1～3的工序。1确定植物体所表达的UGT的氨基酸序列的工序，2在1中确定的UGT的氨基酸序列中，对与选自序列号2的氨基酸残基X2、序列号2的氨基酸残基X3、序列号4的第156位的氨基酸残基及或序列号4的第233位的氨基酸残基的氨基酸残基对应的氨基酸残基进行确定的工序，及3与序列号2的氨基酸残基X2或序列号4的第156位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Thr或Ser，优选为Thr时，及或与序列号2的氨基酸残基X3或序列号4的第233位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Ser或Thr，优选为Ser时，推断在与植物体中累积的甜菊醇糖苷的13位葡萄糖的2位键合的糖中葡萄糖所占比例高，与序列号2的氨基酸残基X2或序列号4的第156位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Val、Leu、Ile、Ala或Met，优选为Val时，及或与序列号2的氨基酸残基X3或序列号4的第233位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Phe或Tyr，优选为Phe时，推断在与植物体中累积的甜菊醇糖苷的13位葡萄糖的2位键合的糖中鼠李糖所占比例高的工序。上述方法的工序1中，植物体所表达的UGT的氨基酸序列的确定，可以通过理论性的或已知的任意的实验方法来实施。作为UGT的氨基酸序列的实验性的确定方法，例如可列举，从作为对象的植物体中提取mRNA，利用已知的UGT的碱基序列为基础制作的探针或引物取得具有类似的碱基序列的基因，并以此为基础对氨基酸序列进行确定的方法。上述方法的工序2中，作为对象的UGT的氨基酸序列中，与特定的氨基酸残基相对应的氨基酸残基的确定，可以与制造改变了糖供体选择性的UGT的方法一样地实施。在上述方法的工序3中，所谓于与植物体中累积的甜菊醇糖苷的13位葡萄糖的2位键合的糖葡萄糖中所占比例高是指，在上述植物体所表达的UGT的氨基酸序列中，与序列号2的氨基酸残基X2或序列号4的第156位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Thr或Ser，优选为Thr时，及或与序列号2的氨基酸残基X3或序列号4的第233位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Ser或Thr，优选为Ser时，与并非这样的植物体，例如对具有与序列号2的氨基酸残基X2或序列号4的第156位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Val，且与序列号2的氨基酸残基X3或序列号4的第233位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Phe的氨基酸序列的UGT进行表达的植物体相比，在与植物体中累积的甜菊醇糖苷的13位葡萄糖的2位键合的糖中葡萄糖所占比例高。上述葡萄糖的比例，例如，与对具有与序列号2的氨基酸残基X2或序列号4的第156位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Val，且与序列号2的氨基酸残基X3或序列号4的第233位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Phe的氨基酸序列的UGT进行表达的植物体相比，可以高约10％以上、约20％以上、约30％以上、约40％以上、约50％以上、约60％以上、约70％以上、约80％以上、约90％以上、约100％以上。在上述方法的工序3中，所谓在与植物体中累积的甜菊醇糖苷的13位葡萄糖的2位键合的糖鼠李糖中所占比例高是指，在上述植物体所表达的UGT的氨基酸序列中，与序列号2的氨基酸残基X2或序列号4的第156位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Val、Leu、Ile、Ale或Met，优选为Val时，及或与序列号2的氨基酸残基X3或序列号4的第233位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Phe或Tyr，优选为Phe时，与并非这样的植物体，例如对具有与序列号2的氨基酸残基X2或序列号4的第156位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Thr，且与序列号2的氨基酸残基X3或序列号4的第233位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Ser的氨基酸序列的UGT进行表达的植物体相比，在与植物体中累积的甜菊醇糖苷的13位葡萄糖的2位键合的糖中鼠李糖所占比例高。上述鼠李糖的比例，例如，与对具有与序列号2的氨基酸残基X2或序列号4的第156位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Thr，且与序列号2的氨基酸残基X3或序列号4的第233位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Ser的氨基酸序列的UGT进行表达的植物体相比，可以高约10％以上、约20％以上、约30％以上、约40％以上、约50％以上、约60％以上、约70％以上、约80％以上、约90％以上、约100％以上。根据本方法通过对植物体中累积的糖苷糖进行推断，可以合理的实施与糖苷糖的特征赋予相关的实验设计，消减不需要的实验，对具有所希望的糖苷糖轮廓的植物体的筛选进行有效的实施。9.筛选作为甜菊醇糖苷累积含有葡萄糖或鼠李糖的糖苷的植物体的方法在其他的侧面，本发明提供一种筛选作为甜菊醇糖苷累积在13位葡萄糖的2位上含有葡萄糖或鼠李糖的糖苷的植物体的方法。在一种实施方式中，上述方法含有以下1～3的工序。1确定植物体所表达的UGT的氨基酸序列的工序，21中确定的UGT的氨基酸序列中，对与选自序列号2的氨基酸残基X2、序列号2的氨基酸残基X3、序列号4的第156位的氨基酸残基及或序列号4的第233位的氨基酸残基的氨基酸残基对应的氨基酸残基进行确定的工序，及3与序列号2的氨基酸残基X2或序列号4的第156位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Thr或Ser，优选为Thr时，及或与序列号2的氨基酸残基X3或序列号4的第233位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Ser或Thr，优选为Ser时，判定植物体具有作为甜菊醇糖苷会累积在13位葡萄糖的2位上含有葡萄糖的糖苷的可能性，与序列号2的氨基酸残基X2或序列号4的第156位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Val、Leu、Ile、Ala或Met，优选为Val时，及或与序列号2的氨基酸残基X3或序列号4的第233位的氨基酸残基相对应的氨基酸残基为Phe或Tyr，优选为Phe时，判定植物体具有作为甜菊醇糖苷会累积在13位葡萄糖的2位上含有鼠李糖的糖苷的可能性的工序。上述方法的工序1及2，可以和“推断在植物体中累积的与甜菊醇糖苷的13位葡萄糖的2位键合的糖的种类的方法”一样地实施。在同一植物体中调查的UGT可以是1个也可是复数个。当调查的UGT存在复数个时，有时对于某一UGT判定为植物体具有作为甜菊醇糖苷会累积在13位葡萄糖的2位上含有葡萄糖的糖苷的可能性，对于其他的UGT判定为植物体具有作为甜菊醇糖苷累积在13位葡萄糖的2位上含有鼠李糖的糖苷的可能性，这时可以判定为植物体作为甜菊醇糖苷累积在13位葡萄糖的2位上含有葡萄糖的糖苷及含有鼠李糖的糖苷的两者。根据本方法不需要直接检测出植物体中含有的糖苷，就可以筛选出累积有所希望的糖苷的植物体，并可以使食品原料的选择效率化。实施例以下通过使用实施例对本发明进行更加具体的说明，但是本发明的范围并非由这些实施例而被限制。[实施例1]甜菊醇糖苷己糖转移酶的候选基因的分离本实施例中使用的分子生物学的方法，只要无其他详述，依照MolecularCloningSambrooketal.,ColdSpringHarborLaboratoryPress,2001中所记载的方法。关于甜菊叶cDNA是通过用RNeasyPlantMini试剂盒QIAGEN从甜菊叶中提取总RNA，将其中0.5μg通过RandomOligo-dT引物进行反转录RT反应而获得。PCR反应液50μl由来自甜菊叶的cDNA1μl、1×ExTaqbufferTaKaRaBio、0.2mMdNTPs、各引物0.4pmolμl、ExTaqpolymerase2.5U所组成。作为引物使用了下述物质。UGT91D2及UGT91D2#16基因扩增用引物集SrUGT91D2-pET15b-FW5’-TGCCGCGCGGCAGCCATATGTACAACGTTACTTATCATC-3’序列号37SrUGT91D2-pET15b-RV5’-GTTAGCAGCCGGATCCTTAACTCTCATGATCGATGGCAA-3’序列号38PCR反应，于94℃下反应3分钟后，对94℃下1分钟、50℃下1分钟、72℃下2分钟的反应进行了总计30个循环的扩增。通过0.8％琼脂糖凝胶对PCR产物进行电泳、溴化乙锭染色，结果得到了由各自的模板DNA推断的约1.4kb大小的扩增带图3。此PCR产物用制造商所推荐的方法亚克隆到了pENTR-TOPODirectional载体Invitrogen。利用DNASequencermodel3100AppliedBiosystems，通过依据合成寡核苷酸引物的引物步移法确定序列，结果明确了存在2种基因。其中之一为已知的UGT91D2CDS序列：序列号3、氨基酸序列：序列号4，另一个为与UGT91D2具有高相同性的新型甜菊UGT基因CDS序列：序列号1、氨基酸序列：序列号2。此相同基因UGT91D2L#16，与UGT91D2在DNA水平上显示了99％9碱基不同、氨基酸水平上显示了98％7残基不同的序列一致性。[实施例2]表达载体的构建利用添加到引物的NdeI及BamHI的限制酶部位序列号5及6的下划线部将约1.4kb的UGT91D2及UGT91D2L#16的ORF片段切出，与作为大肠杆菌表达载体的pET15bNovagen公司的NdeI及BamHI位点连接，得到本酶基因的大肠杆菌表达载体。位于本载体NdeI位点上游的His标签和插入的基因的开放阅读框相匹配，为了使融合了UGT和His标签的嵌合蛋白进行表达而设计。[实施例3]重组蛋白质的表达及提纯为了明确本酶的生物化学机能，使本酶在大肠杆菌中表达。利用上述得到的2种UGT91D2基因的大肠杆菌表达用质粒依照常规对大肠杆菌BL21DE3进行了转化。将得到的转化体，在含有50μgml的氨苄青霉素的LB培养基10gltryptonepepton，5glyeastextract，1glNaCl4ml中，于37℃下振动培养一晚。将达到静止期的培养液4ml接种于相同组成的培养基中，于37℃下振动培养。在菌体浓度OD600大约达到0.5的时间点添加最终浓度0.5mM的IPTG，于18℃下振动培养20小时。以下所有操作于4℃下实施。通过将培养的转化体进行离心分离5,000×g，10min收集菌群，添加BufferS[20mMHEPES缓冲液pH7.5、20mMimidazol,14mMβ-巯基乙醇]1mlgcell，并悬浊。接下来，实施超声波破碎15sec×8回，并实施离心分离15,000×g、15min。将得到的上清液作为粗酶液进行了回收。将粗酶液负荷于用BufferS进行了平衡化的HisSpinTrapGEHealthcare中，并进行了离心70×g、30sec。用缓冲液洗净后，用含有100mM及500mM的imidazole的BufferS各5ml，对与层析柱结合的蛋白质进行了阶段性的洗脱。利用MicroconYM-30Amicon对各洗脱部分向20mMHEPES缓冲液pH7.5、14mMβ-巯基乙醇中进行了缓冲液置换透析倍数约500倍。制备的酶的SDS-PAGE分离后的CBB染色及利用了抗HisTag抗体的蛋白质印迹的结果，在200mMimidazole洗脱部分中，在HisTag融合UGT91D2及UGT91D2L#16的嵌合蛋白的推断分子量的约50kDa附近确定了蛋白质，因此将该部分用于酶分析图4。[实施例4]UGT91D2及UGT91D2L#16的酶活性测定标准的酶反应条件如以下所示。用蒸馏水制备50μl反应液2mMUDP-葡萄糖、0.1mM糖受体底物、100mM磷酸钾缓冲液pH7.5、提纯酶溶液25μl、30℃、使其反应1小时。对酶反应液5μl在下述条件下进行了LC-MS分析。LC条件色谱柱：ImtaktSM-C183.0um4.6mmI.D.×250mm流动相：A:MilliQWater+0.2％aceticacid,B:Methanol梯度：0-5minBconc10％恒定、5-20minBconc10％→70％、20-25minBconc70％→100％、25-35minBconc100％恒定、35-36minBconc100％→10％、45min分析结束流速：0.4mLmin色谱柱温箱：40℃MS条件ESI负模式选择的离子监测：mz641.3、787.3、803.3、935.4、949.4、965.4、1111.4、1127.4、1259.5、1273.5、1289.5、1435.5如现有文献专利文献2中所记载的，使重组SrUGT91D2蛋白质和UDP-葡萄糖一起与甜叶悬钩子苷进行反应时，13位的葡萄糖的2位葡糖基化生成了甜菊苷图5-2。在同样的条件下SrUGT91D2L#16也具有使甜叶悬钩子苷葡糖基化而生产甜菊苷的活性，但是相比于SrUGT91D2活性较弱图5-3。另一方面在负对照区，未在甜叶悬钩子苷中确认己糖转移反应图5-1。接下来，使重组SrUGT91D2蛋白质和UDP-鼠李糖一起与甜叶悬钩子苷进行反应时，13位的葡萄糖的2位鼠李糖苷化生成了杜克苷A图6-2。在同样的条件下SrUGT91D2L#16具有使甜叶悬钩子苷鼠李糖苷化而生产杜克苷A的活性，但是相比于SrUGT91D2活性显著较高图6-3。另一方面在负对照区，未在甜叶悬钩子苷中确认己糖转移反应图6-1。基于上述结果将UGT91D2及UGT91D2L#16的对比活性总结至图7中。此外，将使用UGT91D2和UGT91D2L#16的甜菊醇糖苷的糖苷化路径总结至图8。根据以上结果，明确了SrUGT91D2及SrUGT91D2L#16具有使甜叶悬钩子苷的13位的葡萄糖的2位鼠李糖苷化，生成杜克苷A的活性。特别与SrUGT91D2相比具有7残基的氨基酸不同的SrUGT91D2L#16具有显著的鼠李糖转移活性，认为是有助于在甜菊中杜克苷A及其衍生物即Reb.C的合成的物质。[实施例5]通过利用酵母菌发酵生产合成Reb.C在酵母菌中，由甜菊醇使其生成各种甜菊醇糖苷。首先，培育了来自甜菊的糖苷化酶基因UGT85C2序列号7、UGT91D2序列号3、UGT74G1序列号9、UGT76G1序列号11的4种或UGT85C2、UGT91D2L#16、UGT74G1、UGT76G1的4种和来自拟南芥的UDP-鼠李糖合成酶基因AtRHM2序列号13同时表达的酵母菌。糖苷化酶基因及鼠李糖合成酶基因cDNA的克隆来自甜菊的UGT91D2及UGT91D2L#16的cDNA的克隆如上所述的进行了实施。为了克隆其他来自甜菊的各UGT基因，制成了以下的引物集。UGT85C2基因扩增用引物集CACC-NdeI-SrUGT85C2-Fw下划线部为NdeI识别部位：5’-CACCCATATGGATGCAATGGCTACAACTGAGAA-3’序列号14BglII-SrUGT85C2-Rv下划线部为BglII识别部位：5’-AGATCTCTAGTTTCTTGCTAGCACGGTGATTT-3’序列号15UGT74G1基因扩增用引物集CACC-NdeI-SrUGT74G1-Fw下划线部为NdeI识别部位：5’-CACCCATATGGCGGAACAACAAAAGATCAAGAAAT-3’序列号16BamHI-SrUGT74G1-Rv下划线部为BamHI识别部位：5’-GGATCCTTAAGCCTTAATTAGCTCACTTACAAATT-3’序列号17UGT76G1基因扩增用引物集CACC-NdeI-SrUGT76G1-Fw下划线部为NdeI识别部位：5’-CACCCATATGGAAAATAAAACGGAGACCA-3’序列号18BamHI-SrUGT76G1-Rv下划线部为BamHI识别部位：5’-GGATCCTTACAACGATGAAATGTAAGAAACTA-3’序列号19PCR反应液50μl由来自甜菊叶的cDNA1μl、1×KODplusbufferTOYOBO、0.2mMdNTPs、各引物0.4pmolμl、1mMMgSO4,1U耐热性KODpluspolymerase所组成。PCR反应，于95℃下反应5分钟后，对94℃下0.5分钟、50℃下0.5分钟、68℃下2分钟的反应进行了总计30个循环的扩增。通过0.8％琼脂糖凝胶对各PCR产物进行电泳、溴化乙锭染色，结果得到了由各自的模板DNA推断的约1.4kb大小的扩增带。此PCR产物用制造商所推荐的方法亚克隆到了pENTR-TOPODirectional载体Invitrogen。利用DNASequencermodel3100AppliedBiosystems，通过依据合成寡核苷酸引物的引物步移法确定序列，确定了作为目标的UGT基因，即UGT85C2、UGT74G1、UGT76G1的全部UGT基因完成了克隆。酵母菌用表达载体的构建为了将上述UGT基因及UDP-鼠李糖合成酶基因，以及来自拟南芥的UDP-鼠李糖合成酶基因AtRHM2JBiolChem2007Okaet.al编入酵母菌表达载体而设计了下述引物集。SrUGT85C2集Bgl2-UGT85C2-F下划线部为BglII识别部位：5’-ACAGATCTATGGATGCAATGGCTACAACTGAGA-3’序列号20Sal-UGT85C2-R下划线部为SalI识别部位：5’-TAGTCGACTAGTTTCTTGCTAGCACGGTGATTTC-3’序列号21SrUGT91D2集NotI-UGT91DIL3-F下划线部为NotI识别部位：5’-AAGCGGCCGCATGTACAACGTTACTTATCATCAAAATTCAAA-3’序列号22Pac-UGT91D1L3-R下划线部为PacI识别部位：5’-CGTTAATTAACTCTCATGATCGATGGCAACC-3’序列号23SrUGT74G1集Not-UGT74G1-F下划线部为NotI识别部位：5’-AAGCGGCCGCATGGCGGAACAACAAAAGATCAAG-3’序列号24Pac-UGT74G1-R下划线部为PacI识别部位：5’-CGTTAATTAAGCCTTAATTAGCTCACTTACAAATTCG-3’序列号25SrUGT76G1集Bam-UGT76G1-F下划线部为BamHI识别部位：5’-AAGGATCCATGGAAAATAAAACGGAGACCACCG-3’序列号26Sal-UGT76G1-R下划线部为SalI识别部位：5’-GCGTCGACTTACAACGATGAAATGTAAGAAACTAGAGACTCTAA-3’序列号27AtRHM2集Bam-AtRHM2-F下划线部为BamHI识别部位：5’-GGATCCATGGATGATACTACGTATAAGCCAAAG-3’序列号28Xho-AtRHM2-R下划线部为XhoI识别部位：5’-CTCGAGTTAGGTTCTCTTGTTTGGTTCAAAGA-3’序列号29通过将UGT85C2作为模板与SrUGT85C2集、将UGT91D2或UGT91D2L#16作为模板与SrUGT91D2集、将UGT74G1作为模板与SrUGT74G1集、将UGT76G1作为模板与SrUGT76G1集、将AtAHM2作为模板与AtAHM2集、组成模板与引物的组合，利用耐热性KODDNA聚合酶东洋纺，通过PCR扩增，在各自的ORF的两端附加了限制酶部位。利用ZeroBluntTOPOPCRCloningKitInvitrogen对得到的DNA片段进行亚克隆，利用DNASequencermodel3100AppliedBiosystems，通过依据合成寡核苷酸引物的引物步移法确定序列，确认了作为目标的UGT基因分别被克隆。利用pESC酵母菌表达系统Stratagene为了使上述基因在酵母菌中表达，构建了以下表达载体。1质粒pESC-URA-UGT56或pESC-URA-UGT56R的构建以限制酶BglII和限制酶SalI将UGT85C2切出，与以限制酶BamHI和限制酶SalI将载体pESC-URAStratagene切断的产物进行连接，得到质粒pESC-URA-UGT-1。将以限制酶NotI和限制酶PacI对UGT91D2或UGT91D2L#16进行切断的产物和以限制酶NotI和限制酶PacI将该质粒pESC-URA-UGT-1切断的产物连接，得到pESC-URA-UGT56或pESC-URA-UGT56R。2质粒pESC-HIS-UGT78的构建以限制酶BamHI和限制酶SalI将UGT76G1切出，与以相同限制酶将载体pESC-HISStratagene切断的产物进行连接，得到质粒pESC-HIS-UGT-8。将以限制酶NotI和限制酶PacI对UGT74G1进行切断的产物和以限制酶NotI和限制酶PacI将该质粒pESC-HIS-UGT-8切断的产物连接，得到pESC-HIS-UGT78。3质粒pESC-TRP-AtRHM2的构建以限制酶BamHI和限制酶XhoI将AtAHM2切出，与以相同限制酶将载体pESC-TRPStratagene切断的产物进行连接，得到质粒pESC-TRP-AtAHM2。酵母菌的转化将SaccharomycescerevisiaeYPH499株ura3-52lys2-801amberade2-101ochretrp1-Δ63his3-Δ200leu2-Δ1a作为宿主，用醋酸锂法，导入了表1的质粒。作为转化株，选择了用SC-Trp&Ura&His琼脂培养基每1L中，Yeastnitrogenbasewithoutaminoacids6.7g、葡萄糖20g、氨基酸混合粉-Trp&Ura&His1.3g、Bactoagar20g培育的酵母酵母菌。[表1]表l另外氨基酸混合粉-Trp&Ura&His是将腺嘌呤硫酸盐2.5g、L-精氨酸盐酸盐1.2g、L-天冬氨酸6.0g、L-乙酰谷氨酸6.0g、L-亮氨酸3.6g、L-赖氨酸1.8g、L-蛋氨酸1.2g、L-苯丙氨酸3.0g、L-丝氨酸22.5g、L-苏氨酸12g、L-酪氨酸1.8g、L-缬氨酸9.0g混合调制而成。导入基因的表达诱导与表达分析将得到的转化株以下述方式培养。首先，作为预培养在SC-Trp&Ura&His液体培养基去除SC-Trp&Ura&His琼脂培养基Bactoagar10ml中，分别接种各转化株，于30℃下震动培养1天。接下来，作为正式培养，将预培养液的1ml接种到10ml的SG-Trp&Ura&His液体培养基每1L中，Yeastnitrogenbasewithoutaminoacids6.7g、半乳糖20g、氨基酸混合粉-Trp&Ura&His1.3g，于30℃下震动培养2天。为了确认导入转化株的基因是否进行了表达，从培养液中收集菌体，用RNeasyMiniKit，提取总RNA。取总RNA1μg，以SuperscriptII逆转录酶ThermoFisherScientific、随机六聚体作为引物，合成了cDNA。为了确认导入基因的表达，制作了以下引物。UGT85C2表达确认用UGT85C2-r1：5’-CAAGTCCCCAACCAAATTCCGT-3’序列号30UGT91D2及UGT91D2L3#16表达确认用UGT91D1L3-r1：5’-CACGAACCCGTCTGGCAACTC-3’序列号31UGT74G1表达确认用UGT74G1-r1：5’-CCCGTGTGATTTCTTCCACTTGTTC-3’序列号32UGT76G1表达确认用UGT76G1-r1：5’-CAAGAACCCATCTGGCAACGG-3’序列号33AtAHM2表达确认用AtAHM2-r15’-GCTTTGTCACCAGAATCACCATT-3’序列号34GAL10p区域启动子区域PGAL10-f3：5’-GATTATTAAACTTCTTTGCGTCCATCCA-3’序列号35GAL1p区域启动子区域PGAL1-f3：5’-CCTCTATACTTTAACGTCAAGGAGAAAAAACC-3’序列号36各导入基因的表达通过以下引物的组合，将之前合成的cDNA作为模板，利用ExTaqTAKARABIO实施PCR，通过对该产物进行琼脂糖凝胶电泳进行了确认。UGT85C2：UGT85C2-r1序列号30与PGAL1-f3序列号36UGT91D2或UGT91D2L3：UGT91D1L3-r1序列号31与PGAL10-f3序列号35UGT74G1：UGT74G1-r1序列号32与PGAL1-f3序列号36UGT76G1：UGT76G1-r1序列号33与PGAL10-f3序列号35AtAHM2：AtAHM2-r1序列号34与PGAL10-f3序列号35由此，确认了导入的基因在转化株中进行了表达。Reb.C的生产向在正式培养用的液体培养基中，添加每1ml培养基0.5μg或2μg的甜菊醇ChromaDexInc.之外，在与上述实验里相同的条件下进行了培养。培养结束后，通过将培养液离心分离，分离成上清液和菌体。用乙腈对培养上清液进行洗涤后，提供给用水平衡后的Sep-PakC18层析柱，用20％乙腈进行洗净后，用80％乙腈进行洗脱，干燥固化后，溶解至少量的80％乙腈中调制成糖苷样本。将该糖苷样本提供给以下的分析。根据HPLC的分析使用高效液相色谱法HighPerformanceLiquidChromatography：HPLC,对得到的糖苷样品进行了分析。HPLC条件如下所示。色谱柱：COSMOSIL5C18-AR-II4.6mmI.D.×250mmNACALAITESQUE流动相：A:乙腈、B:10mM磷酸钠缓冲液pH2.6梯度：40minBconc70％→30％线性梯度流速：1mL分温度：40℃检测：UV210nm根据LC-MS的分析根据LC-MS的分析在下述条件下进行了实施。LC条件色谱柱：ImtaktSM-C183.0um4.6mmI.D.×250mm流动相：A:MilliQWater+0.2％aceticacid,B:Methanol梯度：0-5minBconc10％恒定、5-20minBconc10％→70％、20-25minBconc70％→100％、25-35minBconc100％恒定、35-36minBconc100％→10％、45min分析结束流速：0.4mLmin色谱柱温箱：40℃MS条件ESI负模式选择的离子监测：mz641.3、787.3、803.3、935.4、949.4、965.4、1111.4、1127.4、1259.5、1273.5、1289.5、1435.5结果如图9～11所示。使UDP-鼠李糖合成酶基因和甜菊醇糖苷化酶基因共表达的A-5678株及A-56R78株中生成了Reb.C。使UGT91D2L#16表达的A-56R78株相比于使UGT91D2表达的A-5678株的Reb.C的生成量较多。[实施例6]SrUGT91D2L#16的分析同源结构分析对于UGT91D2L#16进行了对有助于显著的鼠李糖转移活性的氨基酸残基的推断。UGT91D2L#16与UGT91D2之间不同的7个残基中，为了推断哪个残基与活性相关联进行了同源结构分析。将已明确结晶结构的豆科苜蓿的UGT85H2的结构信息RCSBProteinDataBankPDB、PDBID:2PQ6作为蛋白质结构的模板，以糖供体的UDP-葡萄糖PDBID:2C1Z作为底物进行对接，用现有的方法Noguchietal2009PlantCell.215:1556-152制作了UGT91D2的同源模型。在构建的UGT91D2同源模型中，在确认和UGT91D2#16不同的7个残基的位置时，第156位的Thr残基与UDP-葡萄糖接近，启示了对UDP-糖的选择性的贡献。此外，第233位的Ser残疾也与Thr残基接近，启示了对UDP-糖的选择性的贡献图12～13。变异体的制作制作了对由同源模型推断的氨基酸在UGT91D2及UGT91DL#16中进行了取代的变异体。变异体1及2用于基于大肠杆菌表达蛋白质的invitro化验，变异体1～6提供给基于酵母菌的invitro化验。变异体1：UGT91D2-T156VUGT91D2的第156位的Thr残基取代为Val残基变异体2：UGT91D2L#16-V156TUGT91D2L#16的第156位的Val残基取代为Thr残基变异体3：UGT91D2-S233FUGT91D2的第233位的Ser残基取代为Phe残基变异体4：UGT91D2L#16-F233SUGT91D2L#16的第233位的Phe残基取代为Ser残基变异体5：UGT91D2-T156VS233F分别将UGT91D2的第156位的Thr残基取代为Val残基、第233位的Ser残基取代为Phe残基变异体6：UGT91D2L#16-V156TF233分别将UGT91D2L#16的第156位的Val残基取代为Thr残基、第233位的Phe残基取代为Ser残基如下所述对含有编码变异体的DNA的质粒进行了制备。以变异体1为例，将用下述SrUGT91D2-T156V-FW和SrUGT91D2-pET15b-RV的引物集序列号39及序列号38通过以UT91D2的cDNA为模板的PCR得到的DNA片段与，用SrUGT91D2-T156V-RV和SrUGT91D2-pET15b-FW的引物集序列号40及序列号37通过以UT91D2的cDNA为模板的PCR得到的DNA片段混合，用SrUGT91D2-pET15b-FW和SrUGT91D2-pET15b-RV的引物集序列号37及序列号38再次进行PCR，得到2个片段连接的扩增片段。通过用GeneArtSeamlessCloningandAssemblyThermoFisherScientific公司将该连接片段插入NdeI和BamHI进行消化的大肠杆菌表达载体pET15bNovagen中，得到含有编码UGT91D2-T156V变异体的DNA的大肠杆菌表达质粒。关于编码UGT91D2-T156V变异体的DNA，使用DNASequencermodel3100AppliedBiosystems通过依据合成寡核苷酸引物的引物步移法确定序列，确认了在目标变异以外不存在变异。含有编码其他的变异体的DNA的质粒也用同样的方法进行了制备。SrUGT91D2-pET15b-FW：5’-TGCCGCGCGGCAGCCATATGTACAACGTTACTTATCATC-3’序列号37SrUGT91D2-pET15b-RV：5’-GTTAGCAGCCGGATCCTTAACTCTCATGATCGATGGCAA-3’序列号38SrUGT91D2-T156V-FW：5’-CACTTCTCCGTCGTCACTCCATG-3’序列号39SrUGT91D2-T156V-RV：5’-CATGGAGTGACGACGGAGAAGTG-3’序列号40SrUGT91D2-Like-V156T-FW5’-CACTTCTCCGTCACCACTCCATG-3’序列号41SrUGT91D2-Like-V156T-RV5’-CATGGAGTGGTGACGGAGAAGTG-3’序列号42SrUGT91D2-S233F-FW5’-CTGATTGTTTGCTTTTCAAATGTTACCATGAG-3’序列号43SrUGT91D2-S233F-RV5’-CTCATGGTAACATTTGAAAAGCAAACAATCAG-3’序列号44SrUGT91D2L-F233S-FW5’-CTGATTGTTTGCTTTCCAAATGTTACCATGAG-3’序列号45SrUGT91D2L-F233S-RV5’-CTCATGGTAACATTTGGAAAGCAAACAATCAG-3’序列号46基于大肠杆菌的评估用与实施例3及4同样的方法在大肠杆菌中表达的6种的变异型蛋白质均在通过CBB染色及蛋白质印迹分析在推断的55kDa附近确认了条带。接下来，对于变异体1及2与实施例4同样地使用大肠杆菌中表达的蛋白质进行了评估。作为糖受体的底物使用甜叶悬钩子苷，糖受体使用UDP-葡萄糖对葡糖基化活性GlcT，使用UDP-鼠李糖对鼠李糖苷化活性RhaT分别进行了评估。在前者中作为反应生成物生成甜菊苷，在后者中作为反应生成物生成杜克苷A。变异体1中，将野生型UGT91D2的GlcT活性作为100％的相对GlcT活性降低至5.5％图14A，但是将野生型UGT91D2的RhaT活性作为100％的相对RhaT活性显示了约4.4倍的高活性图14B。另一方面，变异体2中，将野生型UGT91D2L#16的GlcT活性作为100％的相对GlcT活性显示了约3.7倍的高活性图14C，但是将野生型UGT91D2L#16的RhaT活性作为100％的相对RhaT活性显示了35％的低活性图14D。由以上结果，UGT91D2的第156号的位置的氨基酸为Thr残基时，主要转为对UDP-葡萄糖的糖供体选择性，同位置为Val残基时主要转为对UDP-鼠李糖的糖供体选择性。基于酵母菌的评估接下来为了在酵母菌中确认变异体的特异性，对变异体1～6的酶活性与UGT91D2及UGT91D2L#16进行了比较，评估。另外，导入各转化酵母菌并表达的基因设置为各种UGT91的任意1个，UGT85C2、UGT74G1及AtAHM2的4个。1质粒pESC-URA-UGT56M的构建变异体的酵母菌表达用载体如下进行了构建。将上述制作的含有编码各种变异体的DNA的质粒作为模板，使用SrUGT91D2集的引物序列号22、23通过PCR进行了DNA扩增。与实施例5同样地，将用限制酶进行切断的DNA片段，编入质粒pESC-URA-UGT-1中，构建了可以使UGT85C2和各种的UGT91D2变异体进行共表达的pESC-URA-UGT56M1～pESC-URA-UGT56M6。2质粒pESC-HIS-UGT7的构建用限制酶NotI和PacI将UGT74G1切出，与用相同的限制酶对载体pESC-HIS进行切断的产物连接，得到质粒pESC-HIS-UGT7。另外，作为UGT91D2、UGT91D2L#16和AtAHM2的载体，分别使用了实施例5中使用的pESC-URA-UGT56、pESC-URA-UGT56R和pESC-TRP-AtAHM2。酵母菌的转化将SaccharomycescerevisiaeYPH499株作为宿主，用醋酸锂法，将质粒pESC-TRP-AtAHM2与、pESC-HIS-UGT7与、pESC-URA-UGT56M1～pESC-URA-UGT56M6、pESC-URA-UGT56及pESC-URA-UGT56R中的任意1个组合导入，与实施例5同样地进行了选拔。如此，由于UGT91D2的不同，得到了8种类的转化体。与实施例5同样的确认了在得到的转化体中导入的基因有表达。各转化株的培养和培养上清液的甜菊醇糖苷的分析，除向每1ml培养基中添加了2μg的甜菊醇以外，与实施例5同样地进行了实施。酵母的培养上清液中的甜菊醇糖苷的分析的结果，在使基于UGT91D2的变异体变异体1、3、5表达的酵母菌中，GlcT活性生成物即甜菊苷的生成量有降低的趋势。例如，在使变异体5表达的酵母菌中，将使野生型的UGT91D表达的酵母菌中的甜菊苷的生成量作为100％时，有低至37.5％的降低，该活性和UGT91D2L#16的野生型等同图15A。另一方面，基于UGT91D2L#16的变异体变异体2、4、6的GlcT活性，皆比野生型UGT91D2L#16高，变异体6的活性升高至野生型UGT91D2L#16的约2.7倍，与野生型UGT91D2等同图15A。关于RhaT活性生成物即杜克苷的生成量，相比使野生型的UGT91D2表达的酵母菌的杜克苷A的生成量，在使变异体1、3及5表达的酵母菌中确认了约1.5倍以上的增加图15B。另一方面，关于基于UGT91D2L#16的变异体的Rhat活性，任意一个变异体中皆确认了与野生型UGT91D2L#16相比30％以上的降低。此外关于杜克苷A以外的2种甜菊醇鼠李糖苷甜菊醇13位-Glc-Rhaα1,2、19位-Glc-Rhaα1,2及甜菊醇13位-Glc-Rhaα1,2、19位-H也显示了与杜克苷A同样的生成物举动图15C～D。由上述结果，和大肠杆菌重组蛋白质的结果相同，确认了通过酵母菌的Denovo表达，UGT91D2的第156位的残基为Val时，甜菊醇糖苷的糖转为鼠李糖，为Thr时转为葡萄糖。进一步表示了对于第233位的残基，为Phe时转为鼠李糖、为Ser时转为葡萄糖。产业上的可利用性根据本发明，利用SrUGT91D2L#16基因可以使甜菊醇的13位葡萄糖的2位鼠李糖苷化，可以控制甜菊醇糖苷的甜度及味道。将这些基因作为标记可以选拔Reb.C的含量不同的植物体。此外，本发明提供，不仅在植物中，在微生物中用于生产以Reb.C为代表的含有鼠李糖的甜菊醇糖苷的分子工具。序列表文本序列号2中，所谓氨基酸残基X1表示第42位的氨基酸残基Phe，所谓氨基酸残基X2表示第156位的氨基酸残基Val，所谓氨基酸残基X3表示第233位的氨基酸残基Phe，所谓氨基酸残基X4表示第298位的氨基酸残基Ala，所谓氨基酸残基X5表示第394位的氨基酸残基Leu，所谓氨基酸残基X6表示第439位的氨基酸残基Asn，所谓氨基酸残基X7表示第471位的氨基酸残基Phe。SEQUENCELISTINGSUNTORYHOLDINGSLIMITED甜菊（Steviarebaudiana）醇糖苷己糖转移酶及编码该物质的基因G1647WOJP2016-2526432016-12-2746PatentInversion3.511458DNA甜菊（Steviarebaudiana）CDS1..14581atgtacaacgttacttatcatcaaaattcaaaagcaatggctaccagt48MetTyrAsnValThrTyrHisGlnAsnSerLysAlaMetAlaThrSer151015gactccatagttgacgaccgtaagcagcttcatgttgcgacgttccca96AspSerIleValAspAspArgLysGlnLeuHisValAlaThrPhePro202530tggcttgctttcggtcacatcctccctttccttcagctttcgaaattg144TrpLeuAlaPheGlyHisIleLeuProPheLeuGlnLeuSerLysLeu354045atagctgaaaagggtcacaaagtctcgtttctttctaccaccagaaac192IleAlaGluLysGlyHisLysValSerPheLeuSerThrThrArgAsn505560attcaacgtctctcttctcatatctcgccactcataaatgttgttcaa240IleGlnArgLeuSerSerHisIleSerProLeuIleAsnValValGln65707580ctcacacttccacgtgtccaagagctgccggaggatgcagaggcgacc288LeuThrLeuProArgValGlnGluLeuProGluAspAlaGluAlaThr859095actgacgtccaccctgaagatattccatatctcaagaaggcttctgat336ThrAspValHisProGluAspIleProTyrLeuLysLysAlaSerAsp100105110ggtcttcaaccggaggtcacccggtttctagaacaacactctccggac384GlyLeuGlnProGluValThrArgPheLeuGluGlnHisSerProAsp115120125tggattatttatgattatactcactactggttgccatccatcgcggct432TrpIleIleTyrAspTyrThrHisTyrTrpLeuProSerIleAlaAla130135140agcctcggtatctcacgagcccacttctccgtcgtcactccatgggcc480SerLeuGlyIleSerArgAlaHisPheSerValValThrProTrpAla145150155160attgcttatatgggaccctcagctgacgccatgataaatggttcagat528IleAlaTyrMetGlyProSerAlaAspAlaMetIleAsnGlySerAsp165170175ggtcgaaccacggttgaggatctcacgacaccgcccaagtggtttccc576GlyArgThrThrValGluAspLeuThrThrProProLysTrpPhePro180185190tttccgaccaaagtatgctggcggaagcatgatcttgcccgactggtg624PheProThrLysValCysTrpArgLysHisAspLeuAlaArgLeuVal195200205ccttacaaagctccggggatatctgatggataccgtatggggctggtt672ProTyrLysAlaProGlyIleSerAspGlyTyrArgMetGlyLeuVal210215220cttaagggatctgattgtttgcttttcaaatgttaccatgagtttgga720LeuLysGlySerAspCysLeuLeuPheLysCysTyrHisGluPheGly225230235240actcaatggctacctcttttggagacactacaccaagtaccggtggtt768ThrGlnTrpLeuProLeuLeuGluThrLeuHisGlnValProValVal245250255ccggtgggattactgccaccggaaatacccggagacgagaaagatgaa816ProValGlyLeuLeuProProGluIleProGlyAspGluLysAspGlu260265270acatgggtgtcaatcaagaaatggctcgatggtaaacaaaaaggcagt864ThrTrpValSerIleLysLysTrpLeuAspGlyLysGlnLysGlySer275280285gtggtgtacgttgcattaggaagcgaggctttggtgagccaaaccgag912ValValTyrValAlaLeuGlySerGluAlaLeuValSerGlnThrGlu290295300gttgttgagttagcattgggtctcgagctttctgggttgccatttgtt960ValValGluLeuAlaLeuGlyLeuGluLeuSerGlyLeuProPheVal305310315320tgggcttatagaaaaccaaaaggtcccgcgaagtcagactcggtggag1008TrpAlaTyrArgLysProLysGlyProAlaLysSerAspSerValGlu325330335ttgccagacgggttcgtggaacgaactcgtgaccgtgggttggtctgg1056LeuProAspGlyPheValGluArgThrArgAspArgGlyLeuValTrp340345350acgagttgggcacctcagttacgaatactgagccatgagtcggtttgt1104ThrSerTrpAlaProGlnLeuArgIleLeuSerHisGluSerValCys355360365ggtttcttgactcattgtggttctggatcaattgtggaagggctaatg1152GlyPheLeuThrHisCysGlySerGlySerIleValGluGlyLeuMet370375380tttggtcaccctctaatcatgctaccgctttttggggaccaacctctg1200PheGlyHisProLeuIleMetLeuProLeuPheGlyAspGlnProLeu385390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权利要求：1.选自以下a～c中的任一项所记载的蛋白质：a由序列号2的氨基酸序列构成的蛋白质；b由序列号2的氨基酸序列中除氨基酸残基X7以外的1～48个氨基酸缺失、取代、插入、及或添加的氨基酸序列构成的，且具有向下述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质；c具有对于序列号2的氨基酸序列具有90％以上的序列一致性，且与氨基酸残基X7对应的氨基酸为同一氨基酸的氨基酸序列的，且具有向下述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质，式中，R1表示H、C1～C20烷基、C2～C20烯基、C2～C20炔基、C4～C20烷基二烯基、C6～C18芳基、C6～C20烷基芳基、C6～C20芳基烷基、C4～C20环烷基、C4～C20环烯基、C3～C10环烷基C1～C10烷基或糖残基。2.根据权利要求1所述的蛋白质，其特征在于，为，b'由序列号2的氨基酸序列中除氨基酸残基X1～X7以外的1～48个氨基酸缺失、取代、插入、及或添加的氨基酸序列构成的，且具有向所述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质；或c'具有对于序列号2的氨基酸序列具有90％以上的序列一致性，且与氨基酸残基X1～X7对应的氨基酸为同一氨基酸的氨基酸序列的，且具有向所述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质。3.选自以下b”、c”、d～i中的任一项所记载的蛋白质：b”由序列号2的氨基酸序列中除氨基酸残基X2及或X3以外的1～48个氨基酸缺失、取代、插入、及或添加的氨基酸序列构成的，且具有向下述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质；c”具有对于序列号2的氨基酸序列具有90％以上的序列一致性，且与氨基酸残基X2及或X3对应的氨基酸为同一氨基酸的氨基酸序列的，且具有向下述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质；d由序列号4的氨基酸序列中第156位的氨基酸残基为Val，及或第233位的氨基酸残基为Phe的氨基酸序列构成的蛋白质；e由上述d的蛋白质中，1～48个氨基酸缺失、取代、插入、及或添加，与序列号4的第156位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Val，及或与序列号4的第233位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Phe的氨基酸序列构成的，且具有向下述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质；f具有对于上述d的蛋白质的氨基酸序列具有90％以上的序列一致性，且与序列号4的第156位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Val，及或与序列号4的第233位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Phe的氨基酸序列的，且具有向下述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质；g序列号2的氨基酸序列中氨基酸残基X2为Thr，及或氨基酸残基X3为Ser的蛋白质；h由上述g的蛋白质中，1～48个氨基酸缺失、取代、插入、及或添加，与氨基酸残基X2对应的氨基酸残基为Thr，及或与氨基酸残基X3对应的氨基酸残基为Ser的氨基酸序列构成的，且具有向下述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质；i具有对于上述g的蛋白质的氨基酸序列具有90％以上的序列一致性，且与氨基酸残基X2对应的氨基酸残基为Thr，及或与氨基酸残基X3对应的氨基酸残基为Ser的氨基酸序列的，且具有向下述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质，式中，R1表示H、C1～C20烷基、C2～C20烯基、C2～C20炔基、C4～C20烷基二烯基、C6～C18芳基、C6～C20烷基芳基、C6～C20芳基烷基、C4～C20环烷基、C4～C20环烯基、C3～C10环烷基C1～C10烷基或糖残基。4.根据权利要求1～3中任一项所述的蛋白质，其特征在于，所述己糖为选自葡萄糖或鼠李糖中的物质。5.根据权利要求1～4中任一项所述的蛋白质，其特征在于，所述R1为H或葡萄糖单体或葡萄糖二聚体的糖残基。6.根据权利要求1～5中任一项所述的蛋白质，其特征在于，所述化合物为甜菊单糖苷或甜叶悬钩子苷。7.选自以下a～d中的多核苷酸：a含有序列号1的碱基序列的多核苷酸；b编码由序列号2的氨基酸序列构成的蛋白质的多核苷酸；c编码由序列号2的氨基酸序列中除氨基酸残基X7以外1～48个氨基酸缺失、取代、插入及或添加的氨基酸序列构成的，且具有向下述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位添加己糖的活性的蛋白质的多核苷酸；d编码具有对于序列号2的氨基酸序列具有90％以上的序列一致性，且与氨基酸残基X7对应的氨基酸为同一氨基酸的氨基酸序列的，且具有向下述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质的多核苷酸，式中，R1表示H、C1～C20烷基、C2～C20烯基、C2～C20炔基、C4～C20烷基二烯基、C6～C18芳基、C6～C20烷基芳基、C6～C20芳基烷基、C4～C20环烷基、C4～C20环烯基、C3～C10环烷基C1～C10烷基或糖残基。8.根据权利要求7所述的多核苷酸，其特征在于，为，c'编码由序列号2的氨基酸序列中除氨基酸残基X1～X7以外1～48个氨基酸缺失、取代、插入及或添加的氨基酸序列构成的，且具有向所述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位添加己糖的活性的蛋白质的多核苷酸；或d'编码具有对于序列号2的氨基酸序列具有90％以上的序列一致性，且与氨基酸残基X1～X7对应的氨基酸为同一氨基酸的氨基酸序列的，且具有向所述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质的多核苷酸。9.选自以下c”、d”、e～j中的多核苷酸：c”编码在序列号2的氨基酸序列中除氨基酸残基X2及或X3以外的1～48个氨基酸缺失、取代、插入、及或添加的氨基酸序列构成的，且具有向下述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质的多核苷酸；d”编码具有对于序列号2的氨基酸序列具有90％以上的序列一致性，且与氨基酸残基X2及或X3对应的氨基酸为同一氨基酸的氨基酸序列的，且具有向下述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质的多核苷酸；e编码序列号4的氨基酸序列中，第156位的氨基酸残基为Val，及或第233位的氨基酸残基为Phe的蛋白质的多核苷酸；f编码由上述e所述的蛋白质中，1～48个氨基酸缺失、取代、插入、及或添加，与序列号4的第156位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Val，及或与序列号4的第233位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Phe的氨基酸序列构成的，且具有向下述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质的多核苷酸；g编码具有对于上述e所述的蛋白质的氨基酸序列具有90％以上的序列一致性，且与序列号4的第156位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Val，及或与序列号4的第233位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Phe的氨基酸序列的，且具有向下述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质的多核苷酸；h编码序列号2的氨基酸序列中，氨基酸残基X2为Thr，及或氨基酸残基X3为Ser的蛋白质的多核苷酸；i编码由在上述h所述的蛋白质中1～48个氨基酸缺失、取代、插入、及或添加，与氨基酸残基X2对应的氨基酸残基为Thr，及或与氨基酸残基X3对应的氨基酸残基为Ser的氨基酸序列构成的，且具有向下述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质的多核苷酸；j编码具有对于上述h所述的蛋白质的氨基酸序列具有90％以上的序列一致性，且与氨基酸残基X2对应的氨基酸残基为Thr，及或与氨基酸残基X3对应的氨基酸残基为Ser的氨基酸序列的，且具有向下述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性的蛋白质的多核苷酸，式中，R1表示H、C1～C20烷基、C2～C20烯基、C2～C20炔基、C4～C20烷基二烯基、C6～C18芳基、C6～C20烷基芳基、C6～C20芳基烷基、C4～C20环烷基、C4～C20环烯基、C3～C10环烷基C1～C10烷基或糖残基。10.根据权利要求7～9中任一项所述的多核苷酸，其特征在于，所述己糖为选自葡萄糖或鼠李糖中的物质。11.根据权利要求7～10中任一项所述的多核苷酸，其特征在于，所述R1为H或葡萄糖单体或葡萄糖二聚体的糖残基。12.根据权利要求7～11中任一项所述的多核苷酸，其特征在于，所述化合物为甜菊单糖苷或甜叶悬钩子苷。13.导入了权利要求7～12中任一项所述的多核苷酸的非人类转化体。14.根据权利要求13所述的转化体，其特征在于，所述多核苷酸为插入到表达载体中的物质。15.根据权利要求13或14所述的转化体，其特征在于，为植物体。16.权利要求13～15中任一项所述的转化体的萃取物。17.含有权利要求16中所述的萃取物的饮食品、医药品或工业原料。18.一种方法，其为以培养权利要求13～15中任一项所述的非人类转化体为特征的蛋白质的制造方法，其特征在于，所述蛋白质具有向下述通式I所示的化合物的13位葡萄糖的2位上添加己糖的活性：式中，R1表示H、C1～C20烷基、C2～C20烯基、C2～C20炔基、C4～C20烷基二烯基、C6～C18芳基、C6～C20烷基芳基、C6～C20芳基烷基、C4～C20环烷基、C4～C20环烯基、C3～C10环烷基C1～C10烷基或糖残基。19.一种甜菊醇糖苷的制造方法，其特征在于，以使用权利要求13～15中任一项所述的非人类转化体为特征。20.根据权利要求19所述的方法，其特征在于，所述甜菊醇糖苷为甜菊双糖苷、甜菊苷、杜克苷A、Reb.E或Reb.C或者这些物质的组合。21.一种甜菊醇糖苷的制造方法，其特征在于，含有使权利要求1～6中任一项所述的蛋白质与UDP-糖和下述通式I所示的化合物反应的工序：式中，R1表示H、C1～C20烷基、C2～C20烯基、C2～C20炔基、C4～C20烷基二烯基、C6～C18芳基、C6～C20烷基芳基、C6～C20芳基烷基、C4～C20环烷基、C4～C20环烯基、C3～C10环烷基C1～C10烷基或糖残基。22.根据权利要求21所述的方法，其特征在于，所述UDP-糖中的糖为葡萄糖或鼠李糖。23.根据权利要求21或22所述的方法，其特征在于，所述甜菊醇糖苷为甜菊双糖苷、甜菊苷、杜克苷A、Reb.E或Reb.C或者这些物质的组合。24.推断与在植物体中累计的甜菊醇糖苷的13位葡萄糖的2位上键合的糖的种类的方法，其特征在于，所述方法含有：1确定植物体所表达的UDP糖依赖性糖基转移酶UGT的氨基酸序列的工序，2于所述1中确定的UGT的氨基酸序列中，对与选自序列号2的氨基酸残基X2、序列号2的氨基酸残基X3、序列号4的第156位的氨基酸残基及或序列号4的第233位的氨基酸残基的氨基酸残基对应的氨基酸残基进行确定的工序，及3与序列号2的氨基酸残基X2或序列号4的第156位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Thr或Ser时，及或与序列号2的氨基酸残基X3或序列号4的第233位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Ser或Thr时，推断在与植物体中累积的甜菊醇糖苷的13位葡萄糖的2位键合的糖中葡萄糖所占比例高，与序列号2的氨基酸残基X2或序列号4的第156位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Val、Leu、Ile、Ala或Met时，及或与序列号2的氨基酸残基X3或序列号4的第233位的氨基酸残基相对应的氨基酸残基为Phe或Tyr时，推断在与植物体中累积的甜菊醇糖苷的13位葡萄糖的2位键合的糖中鼠李糖所占比例高的工序。25.筛选作为甜菊醇糖苷累积在13位葡萄糖的2位上含有葡萄糖或鼠李糖的糖苷的植物体的方法，其特征在于，所述方法含有：1确定植物体所表达的UGT的氨基酸序列的工序，2于所述1中确定的UGT的氨基酸序列中，对与选自序列号2的氨基酸残基X2、序列号2的氨基酸残基X3、序列号4的第156位的氨基酸残基及或序列号4的第233位的氨基酸残基的氨基酸残基对应的氨基酸残基进行确定的工序，及3与序列号2的氨基酸残基X2或序列号4的第156位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Thr或Ser时，及或与序列号2的氨基酸残基X3或序列号4的第233位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Ser或Thr时，判定植物体具有作为甜菊醇糖苷会累积在13位葡萄糖的2位上含有葡萄糖的糖苷的可能性，与序列号2的氨基酸残基X2或序列号4的第156位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Val、Leu、Ile、Ala或Met时，及或与序列号2的氨基酸残基X3或序列号4的第233位的氨基酸残基对应的氨基酸残基为Phe或Tyr时，判定植物体具有作为甜菊醇糖苷会累积在13位葡萄糖的2位上含有鼠李糖的糖苷的可能性的工序。

百度查询： 三得利控股株式会社 甜菊醇糖苷己糖转移酶及编码该物质的基因